Спосіб відтворення повномасштабної моделі артеріальної системи нирок дрібних тварин

Спосіб відтворення повномасштабної моделі артеріальної системи нирок дрібних тварин, що 3 37020 призводити до значних похибок під час статистичної обробки даних, не дозволяючи із упевненістю судити про стр уктур у судинної системи об'єкта. В основу корисної моделі поставлена задача удосконалення способу відтворення повномасштабної моделі артеріальної системи нирок дрібних тварин, у якому забезпечується точне відтворення топографії артеріальних судин нирок та збереження їх природного діаметру, що досягається шляхом контролю тиску під час інфузії пластичної маси. Поставлена задача вирішується тим, що в способі відтворення повномасштабної моделі артеріальної системи нирок дрібних тварин, який включає заповнення судинної системи органу швидко тверднучою пластичною масою з наступним розплавленням м'яких тканин кородуючим розчином, відповідно до корисної моделі, при заповненні судин пластичною масою створюють контрольований тиск, що не перевищує систолічного артеріального тиску у тварин даного виду, шляхом під’єднання до інфузійної системи манометру. Новим у способі, що пропонується, є те, що в судинному руслі об'єкту створюється контрольований тиск, що відповідає фізіологічному. Контроль здійснюється завдяки під’єднання манометру. Ця дія забезпечує точне відтворення топографії артеріальних судин, збереження їх природного діаметру, що дає змогу використовувати отримані препарати для об'єктивної оцінки змін будови судинного русла нирок за наявності різноманітних ренальних патологій. Спосіб відтворення повномасштабної моделі артеріальної системи нирок дрібних тварин реалізують таким чином. Для виготовлення моделі необхідно мати: - Свіжий (не пізніше 10 хвилин від зупинки серця) труп або тварину у стані агонії; - Операційну бригаду у складі 2-3 чол; - Пластичну масу Редонт-03 для виготовлення ортодонтичних (протезних) апаратів; - Манометр мембранний медичний МММ-01 Ул; - Гепарин у розчині 5000 МО/мл; - Шприци одноразові об'ємом від 2мл до 200мл з голками; - Набір хірургічний великий; - Шовк хірургічний №4; - Систему для внутрішньовенних інфузій; - Гумові чи полімерні шланги різних діаметрів (від 6мм до 12мм) - Ексикатор скляний великий; - 20-% розчин сірчаної кислоти; - Витяжну шафу. Техніка виконання: В роботі було використано трупи кішок без ренальної патології, кішок, що хворіли на полікістоз нирок, кішок, що хворіли на гломерулонефрит та труп собаки з новоутворенням нирки. Тварині у стані агонії внутрішньовенно вводили фізіологічний розчин з додаванням гепарину 1000 МО/мл у об'ємі, що відповідає 200 МО гепарину на 1кг маси тварини (цей об'єм зазвичай складав 0,2-1мл для кішок та 1-3мл для собак). Така доза гепарину запобігає тромбоемболії артерій та в той же час не 4 призводить до змін стінок судин [4]. Це необхідно для запобігання передчасного зсідання крові та тромбування судин під час подальшої інфузії пластичної маси. Свіжий труп розміщували на операційному столі для дрібних тварин у дорсовентральному положенні та фіксували. Розтинали грудну порожнину, пунктували дугу аорти шприцем з голкою діаметром не більше 0,6мм (застосування голки більшого діаметру травмує судину) та ін'єкували фізіологічний розчин з додаванням гепарину у кількості 1000 МО/мл у кількості 0,3мл [4]. Витримували експозицію 20 хвилин. Розтинали черевну порожнину. Лігували аорту на 20-25мм дистальніше ниркових артерій [5] шовком №4, не пошкоджуючи її. Літування аорти у вказаному місці не перешкоджає надходженню пластичної маси до артерій дванадцятипалої кишки, що в подальшому важливо для контролю заповнення судин. При цьому каудальна порожниста вена не повинна потрапити під лігатуру. Це необхідно для забезпечення безперешкодного відтоку крові через систему ниркових артеріо-венозних колатералей під час інфузії пластичної маси. Препарували грудний відділ аорти, відтинали аорту від серця дистальніше місця попередньої пункції (для запобігання виливу пластичної маси через пунктуаційний отвір). Відразу ж фіксували відпрепаровану частину аорти на двох прошивних лігатура х з шовк у №4. Паралельно готували до використання пластичну масу Редонт-03. Редонт-03 (виробник - AT "Стома", м. Харків) являє собою самотверднучу пластичну масу на основі сополімеру акрилової групи, забарвлену в рожевий колір, прозору, що складається з двох компонентів: порошку (власне пластична маса) та рідини (розчинник). Для приготування пластмаси слід використовува ти чистий керамічний або скляний посуд. У порошок поступово доливали рідину та ретельно розмішували скляною паличкою до отримання однорідної маси рідкої, але в'язкої консистенції. У окремих випадках до пластичної маси додавали барвники (1-2 краплі кольорових гелевих чорнил). Перевірку консистенції здійснювали заливанням проби готової пластичної маси у шприц з голкою діаметром 0,8мм, без поршня. Готова маса повинна витікати через голку повільно у вигляді густи х крапель. При цьому співвідношення компонентів не відповідає інструкції виробника (рекомендоване співвідношення - 2 частини порошку та 1 частина розчинника - призводить до отримання густої маси тістоподібної консистенції, що використовується для виготовлення ортодонтичних та ортопедичних апаратів) та становить відповідно 1:3-1:4 порошку та розчинника. Пластичну масу набирали у шприц об'ємом від 20мл до 200мл, в залежності від розміру тварини. Контроль тиску під час інфузії здійснювали за допомогою манометру мембранного медичного МММ-01 Ул, з діапазоном вимірювань 20-300мм рт.ст., основною похибкою ±3мм рт.ст. Прилад не потребує коригування нульового положення стрілки протягом всього строку експлуатації (5 років). Шприц обладнували трубкою від системи для внутрішньовенних інфузій, до якої через перехід 5 37020 ник підключали манометр та інфузійну тр убку (для кішок) чи шланг більшого діаметру (для більших крупних тварин) довжиною 100-150мм. Кінець трубки (шлангу) був зрізаним під кутом 45°, без гострих виступів Такий кут зрізу є оптимальним для запобігання розривів аорти під час введення ін фузійної трубки (шлангу). Трубку (шланг) вводили у аорту на глибину 2030мм та надійно фіксували лігатурами, досягаючи герметичності системи аорта-шприц. Пластичну масу вводили під тиском поршня 110мм рт.ст. для кішок та 118мм рт.ст. для собак, не перевищуючи систолічного тиску у клінічно здорових тварин даного виду [6]. Орієнтиром достатнього наповнення артеріальної системи нирок була поява пластичної маси у артеріальних судинах дванадцятипалої кишки на рівні середньої частини підшлункової залози, що контролювали візуально. Слід зазначити, що приготування пластичної маси та підготування трупу необхідно виконувати одночасно, оскільки пластичну масу можна ефективно використати не пізніше, ніж через 1-2 хвилини після розведення. Трубку манометра слід замінювати після кожного досліду. Внаслідок того, що тварині попередньо вводили гепарин, кров не зсідалась та мала змогу під тиском пластичної маси вільно виходити у венозне русло. Після введення пластичної маси герметизували дугу аорти гемостатичним затискачем, зашивали черевну порожнину та залишали труп при кімнатній температурі на 3 години для полімеризації пластичної маси. Після цього обережно розкривали грудну та черевну порожнини, знімали затискач, відпрепаровували аорту, нирки з прилеглими тканинами аж до лігатури на черевній аорті. Препарат занурювали у 20%-й розчин сірчаної кислоти у скляному ексикаторі та залишали у витяжній шафі на 4-5 діб. Один раз на добу препарат промивали у проточній воді для змиття решток 6 м'яких тканин, а розчин замінювали на новий. Після розплавлення всіх решток тканин препарат промивали водою та висушували. Готові препарати мають характерний вигляд (Фігура 1-3). Запропонований спосіб відтворення повномасштабної моделі артеріальної системи нирок дрібних тварин дозволяє отримати більш досконалі зліпки судинного русла органу, що дає можливість вивчати особливості будови судинної системи як показника, що характеризує зміни органу за різних фізіологічних та патологічних станів. Завдяки цьому спосіб може використовуватися як в експериментальній, так і в клінічній ветеринарній медицині. Список літератури 1. Анатомическая техника. Ярославцев Б.М. Фрунзе, 1961. -С.405. 2. Южелевский Ю.А., Петришин В.Л., Семенов Г.М., Федосеева H.H. Применение низькомолекулярного каучука СКТН-МЕД для инъекции сосудов //Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1983. -№7. - С.88-92. 3. Протасович И.П., Симорот Н.И. Апарат для приготовления коррозионных препаратов сосудистой системы ускоренным методом //Здравоохранение Белоруссии. - 1969. - №1. С.83-84. 4. Пламб, Дональд К. Фармакологические препараты в ветеринарной медицине /Перев. с англ. Е.И. Осипова. - М.: Аквариум ЛТД, 2002. -С.381385. 5. ДЖ. С. Бонд, К. Патерсон, А.Х. Мей. Топографическая анатомия собаки и кошки: Пер. С англ. -Mora viapless, Чехия.: 1995. -192с. 6. Клиническая фармакология /В.Д. Соколов, Н.Л. Андреева, Г.А. Ноздрин и др.; Под ред. В.Д. Соколова. -М.: Колос С, 2003. -464с. 7 Комп’ютерна в ерстка Л.Литв иненко 37020 8 Підписне Тираж 28 прим. Міністерство осв іт и і науки України Держав ний департамент інтелектуальної в ласності, вул. Урицького, 45, м. Київ , МСП, 03680, Україна ДП “Український інститут промислов ої в ласності”, вул. Глазунова, 1, м. Київ – 42, 01601