Спосіб підготовки вуглецевого сорбенту

Изобретение относится к способам получения углеродного сорбента и может быть использовано в медицине и медицинской промышленности. Известно, что углеродные сорбенты, как правило, содержат на своей поверхности и в микропорах большое количество пылевидных частиц размером от 0,01 до 10 - 15мкм, способных в процессе гемосорбции проникать сквозь фильтры массообменных устройств в сосудистое русло пациента, вызывая при этом пирогенные реакции, частичную иммунодепрессию и другие отрицательные последствия, Во избежание указанных осложнений углеродные гемосорбенты тща тельно обеспыливают как на этапе их изготовления, так и непосредственно перед применением, например, при помощи метода рециркуляционной промывки [1]. Наиболее близким к предлагаемому по технической сущности является способ подготовки углеродного сорбента [2], включающий деминерализацию углеродсодержащего материала, его депирогенизацию, обеспыливание и помещение в среду хранения, Для увеличения сорбционной емкости, повышения тромборезистентности и улучшения кинетических характеристик в качестве исходного углеродсодержащего материала используют активированный уголь, а обеспыливание ведут биосовместимым раствором поверхностноактивных веществ (П АВ), в качестве которых используют 1 × 10-3 - 2 × 10-2% раствора гепарина, гидролизина и реополиглюкина. В качества среды хранения используют физиологический раствор, Однако использование указанных ПАВ с высоким молекулярным весом при низких концентрациях вещества не обеспечивает необходимой степени обеспыливания, а при высоких - снижается сорбционная активность сорбента. Физиологический раствор как среда хранения при низких температурах теряет свои свойства. Задачей изобретения является дальнейшее повышение сорбционной емкости подготавливаемого углеродного сорбента путем его обработки веществом с более высокой способностью к проникновению между частицами сорбента. Для решения этой задачи в способе подготовки углеродного сорбента, включающем его деминерализацию, депирогенизацию, обеспыливание и помещение в среду хранения, согласно изобретению обеспыливние ведут в этиловой спирте. Кроме того, в качестве среды хранения при этом используют этиловый спирт, ранее примененный при обеспыливании и затем подвергнутый ректификации. Сравнительно малая величина поверхностного натяжения этилового спирта сообщает жидкости высокую проницаемость в щелевидные промежутки между поверхностью сорбента и прилегающими к нему пылевидными частицами. Это приводит, в частности, к образованию расклинивающих усилий, отрывающих частицы пыли от поверхности сорбента. Малый молекулярный вес этилового спирта способствует эффективному выносу пылевых частиц. После отмывки спирт со взвешенными в нем микрочастицами отделяют от сорбента, подвергают ректификации путем перегонки и используют затем в качестве среды хранения сорбента в гемосорбционных колонках. При этом все примеси, которые были сорбированы спиртом во время его первичного контакта с сорбентом, удаляются и уже не снижают его свойств, как это происходило быв случае использования новой порции неочищенного спирта. Пример 1. 1л гемосорбента СКН-1К помещают в двухлитровую колбу и заливают 1,5л этилового спирта. После 30мин встряхивания на шуттеле АВУ с частотой 30 циклов/мин, спирт с содержащимися в нем микрочастицами удаляется и подвергается перегонке при помощи дистиллятора с водяным охлаждением. Перегнанный спирт используется в качестве среды хранения сорбентов, помещаемых в 5 пластиковых разовых колонок объемом 200мл. Параллельно 1л гемосорбента СКН-1К помещают в двухли тровую колбу и заливают 1,5л 0,9% раствора хлористого натрия, содержащего 60мг гепарина (концентрация 5200ЕД/л или 4 × 10-3%). Смесь подвергают встряхивнию на шуттеле АВУ с частотой 30 циклов/мин в течение 30мин, после чего запыленный раствор отделяют от сорбента, сорбент заливают свежим 0,9% раствором хлористого натрия и расфасовывают в 5 пластиковых разовых колонок объемом 200мл. Обе партии по 5 колонок, содержащие в качеставе среды хранения спирт и физиологический раствор, шуттелируют в течение 10 мин с частотой 60 циклов/мин и промывают выток в направлении сверху вниз 1,5л 0,9% раствора хлористого натрия со скоростью 100мл/мин. В последние 100см 3 физиологического раствора добавляют 0,5мл гепарина (2500ЕД) и со скоростью 100мл/мин ведут рециркуляционную отмывку сорбента в течение 10мин. После окончания рециркуляционной промывки колонку перфузируют на выток со скоростью 100мл/мин физиологическим раствором и через 30мин после начала, перфузии отбирают пробу на запыленность перфузата. Проба фотометрируется на спектрофотометре СФ-26 при длине волны 630нм. Далее исследования приведены в табл.1. В примерах 2 и 3 использованы углеродные гемосорбенты марок ГСГД и КАУ-2. Процесс обеспыливания и контроля проводили аналогично примеру 1. Полученные данные сведены в табл.2. Из табл.1 и 2 видно, что все 3 гемосорбента, подвергнутых те хнологическому обеспыливанию заявляемым способом, имеют существенное преимущество по параметру запыленности по сравнению с известным способом подготовки сорбента с использованием высокомолекулярных ПАВ.