Спосіб моделювання електромагнітної взаємодії в системах міжклітинного взаємозв’язку

Спосіб моделювання електромагнітної взаємодії в системах міжклітинного взаємозв'язку, що 3 типу взаємодії, тоді як для аналогічних змін перебігу реакції, залежної від дифузних процесів, характерним є суттєве неспівпадіння їх швидкості. Беручи до уваги наведені міркування, спосіб моделювання електромагнітної взаємодії в системах міжклітинного взаємозв'язку, що включає постановку імунодіагностичних реакцій між інгредієнтами у полімерному середовищі, відповідно до корисної моделі як полімерний субстрат застосовують нашароване на предметне скло гідрофобне полімерне середовище, зокрема, у вигляді силіконової плівки, по обидві сторони якої, а саме під плівку і на її поверхню, наносять інгредієнти реакції, а результати взаємодії реєструють методом поляризаційно-флуоресцентної мікроскопії. Фіг.1. Схема відтворення електромагнітної взаємодії між нативними лейкоцитами і однодобовою культурою тест-мікроорганізму: 1.1 - предметне скло; 1.2 - однодобова чиста культура тестмікроорганізму (1 петля) під силіконовою плівкою; 1.3 - силіконова плівка; 1.4 - краплина нативної крові донора, нанесена на поверхню силіконової плівки. Фіг.2. Реакція лізису лейкоцитів у краплині нативної крові на силіконовій плівці: 2-1 у дослідному препараті (з розміщеною під плівкою однодобовою чистою культурою тестмікроорганізму); 2-2 у контрольному препараті Фіг.3. Схема відтворення електромагнітної взаємодії між нативними лейкоцитами і однодобовою культурою тест-мікроорганізму: 3.1 - предметне скло; 3.2 - однодобова чиста культура тестмікроорганізму (1 петля) під силіконовою плівкою; 3.3 - силіконова плівка; 3.4 - краплина нативної крові донора, нанесена в безпосередній близькості від накритого силіконовою плівкою тест-мікроорганізму; 3.5 - віддалена від накритого плівкою тестмікроорганізму краплина нативної крові. Фіг.4. Реакція лізису лейкоцитів у двох краплинах нативної крові на силіконовій плівці, розміщених на різній відстані від ексцентрично вміщеної під плівкою однодобової чистої культури тестмікроорганізму (поляризаційна флуоресценція: ЛЮМАМ 8-М3): 4.1 - лізис лейкоцитів у ближній від культури тест-мікроорганізму краплині крові; 4.2 - лізис лейкоцитів у віддаленій краплині крові. Фіг.5. Реакція лізису лейкоцитів у двох краплинах нативної крові на агаровій смужці, розміщених на різній відстані від ексцентрично вміщеної однодобової чистої культури тест-мікроорганізму (поляризаційна флуоресценція: ЛЮМАМ 8-М3): 5.1 - лізис лейкоцитів у ближній від культури тест-мікроорганізму краплині крові; 5.2 - лізис лейкоцитів у "віддаленій" краплині крові. Спосіб здійснюють наступним чином. Електромагнітний тип взаємодії в системах міжклітинного взаємозв'язку відтворюють у полімерному гідрофобному середовищі з властивос 42808 4 тями діелектрика і фотонного хвилепровода, яким є силікон. Для цього на предметне скло 1 (Фіг.1) переносять одну мікробіологічну петлю однодобової чистої культури тест-мікроорганізму 2 і нашаровують зверху силіконовий компаунд, який при розтіканні і полімеризації утворює плівку 3, яка герметично закриває внесену на скло однодобову чисту культуру тест-мікроорганізму. Для контролю аналогічний мікропрепарат готують на силіконовій плівці без внесення на предметне скло під плівку петлі культури тест-мікроорганізму. Після витримування при 18-22°С впродовж 10 хв. мікропрепарати спостерігають під мікроскопом за методом поляризаційної флуоресценції, реєструють реакцію клітин крові, перш за все лейкоцитів, у вигляді їх лізису, порівнюючи особливості перебігу реакцій в контролі та дослідному мікропрепараті. Приклад 1. На предметне скло перенесли одну мікробіологічну петлю однодобової чистої культури тестмікроорганізму і нашарували зверху силіконовий компаунд, який при розтіканні і полімеризації утворив оптично прозору плівку. Зверху на плівку дещо збоку від проекції внесеної на скло однодобової культури тест-мікробу нашарували краплину нативної крові. Для контролю аналогічний мікропрепарат приготували на силіконовій плівці без внесення під плівку петлі культури тест-мікроорганізму. Мікропрепарат витримали при 20°С впродовж 10хв і спостерігали під мікроскопом реакцію лейкоцитолізу за методом поляризаційної флуоресценції, порівнюючи особливості перебігу реакцій у контролі та дослідному мікропрепараті. В результаті, встановлено, що в досліді лейкоцитоліз був суттєво вираженішим порівняно із контролем (Фіг.2), що свідчило про здатність силіконової плівки як діелектричного матеріалу з хвилепровідними властивостями передавати цитопатичну інформацію від тест-мікроорганізму ізольованим лейкоцитам, що вказує на електромагнітний тип взаємодії вказаних інгредієнтів. Приклад 2. З метою відтворення електромагнітного типу взаємодії між інгредієнтами імунної реакції як системи міжклітинного взаємозв'язку на предметне скло внесли одну мікробіологічну петлю однодобової чистої культури стафілококу, а зверху нашарували силіконовий компаунд таким чином, щоб мікробна культура була розміщена ексцентрично, як наведено на Фіг.3. На поверхню плівки, що у творилася внаслідок полімеризації компаунду, нанесли дві краплини нативної крові: одну ближче до ексцентрично розташованої однодобової культури тест-мікроорганізму, іншу - на поверхню з протилежного краю плівки. Аналогічним чином виготовили контрольний мікропрепарат на гідрофільній агаровій смужці на окремому предметному склі. Мікропрепарати витримали при 20°С впродовж 10хв. і реєстрували реакцію лізису лейкоцитів, порівнюючи результат в контролі і досліді. При цьому звертали головну увагу на синхронність лейкоцитолітичної реакції у віддалених краплинах крові у дослідному і контрольному мікро 5 42808 препаратах: повна синхронність проявів лейкоцитолізу мала місце в обох краплинах крові - ближній від мікробної культури і віддаленій - при постановці реакції на силіконовій плівці, що в силу хвилепровідних властивостей останньої є свідченням електромагнітної природи взаємодії інгредієнтів (Фіг.4). На противагу цьому для реакцій між інгредієнтами у гідрофільному - агарому середовищі характерною була асинхронність цитопатичних змін (Фіг.5): лейкоцитоліз раніше індукується у ближній від мікробів краплині крові, і лише потім у віддаленій, що слід оцінювати як прояв сил слабкої взаємодії між інгредієнтами, реалізація яких визначається перш за все різною швидкістю дифузії електрично заряджених макромолекул інгредієнтів реакції у гідрофільному середовищі. Приклад 3. 6 Запропонований спосіб відтворення електромагнітного типу взаємодії на клітинномолекулярному і субмолекулярному рівнях було реалізовано в реакціях імунного лейкоцитолізу під впливом низки тест-мікроорганізмів у чистій однодобовій культурі за умови електричної ізоляції останніх від лейкоцитів у мікропрепараті плівкою силікону як діелектрика з властивостями хвилепровода. Результати оцінювали за характером співпадіння у часі реакцій лейкоцитолізу у краплинах крові в контрольих і дослідних пробах (табл.). З наведених у табл. даних видно, що при постановці імунодіагностичних проб на силіконовій плівці однотипні результати відбуваються синхронно в двох віддалених краплинах крові незалежно від виду тест-мікробної культури, що є свідченням електромагнітного типу взаємодії між інгредієнтами. Таблиця Характер прояву реакцій лейкоцитолізу в часі у двох краплинах крові в дослідному (на силіконовій плівці) і контрольному (на смужці агару), нанесених на різній відстанні від тест-мікробної культури № п/п. 1 2 3 4 5 6 Вид тест-мікроорганізму в чистій однодобовій культурі Bacillus subtilis ATCC 6633 –бацила (сінна паличка) Escherichia coli ATCC 25922 - кишкова паличка Staphylococcus aureus ATCC 6538 - золотистий стафілокок Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027 - псевдомонада (синьогнійна паличка) Salmonella typhimurium ATCC 55 - сальмонела Candida albicans ATCC 885-653 - кандида Навпаки, протилежні результати спостерігали при проведенні проб на смужці агару: у всіх випадках цитопатичні, а саме лейкоцитолітичні реакції, здійснювалися асинхронно, тобто у ближніх до тест-мікробної культури краплинах крові лейкоцитоліз відбувався значно раніше, ніж у віддалених, що є доказом переважання слабкого типу взаємодії між інгредієнтами. Отже, за запропонованим способом досягають вищого, ніж за способом-прототипом, рівня методичності та інформативаності при відтворенні електромагнітного типу взаємодії між інгредієнтами, і може бути використаний в експериментальній патології при моделюванні регуляторних процесів на рівні систем міжклітинного взаємозв'язку, а також при вивченні ефективності лікування онкологічних хворих за критерієм відновлення функції міжклітинного взаємозв'язку. Джерело інформації, яке слід взяти до уваги: Характер лейкоцитолізу Характер лейкоцитолізу в дослідній пробі (взаєв контролі (взаємодія модія інгредієнтів на інгредієнтів на смужці силіконовій плівці в двох агару в двох віддалених віддалених краплинах краплинах крові) крові) синхронний асинхронний синхронний асинхронний + + + + + + + + + + + + 1. Kuby, J. 1997. Immunology, 3rd ed. W. H. Freeman and Company, New York. -508p. 2. Дем'яненко В.В., Таран В.М., Хаба В.В. Біофізичні властивості полімерних матеріалів і перспективи їх використання в медицині/Материальї международной научно-практической конференции «Современные вопросы лечения термических поражений и их последствий». Донецк: Nord Press, 2005.-С.20-21. 3. Дем'яненко В.В., Бігуняк А.В. Силіконова пластинка як фотоннокристалічний індуктор корекції рубцеутворення/Матеріали науково-практичної конференції.-Тернопіль: Укрмедкнига, 2008, С.2729. 4. Дон Кларк. Intel совершает прорыв в передаче данных. Источник: Ведомости. 13.02.2004.http://www.sostav.m/news/2004/02/13/71 5/. (WSJ, 12.02.2004, Александр Сафин). 7 Комп’ютерна верстка Н. Лиcенко 42808 8 Підписне Тираж 28 прим. Міністерство освіти і науки України Державний департамент інтелектуальної власності, вул. Урицького, 45, м. Київ, МСП, 03680, Україна ДП “Український інститут промислової власності”, вул. Глазунова, 1, м. Київ – 42, 01601