Спосіб застосування швидкодіючого антидота при анестезії риб

Изобретение относится к промышленному рыбоводству, а именно к применению анестезирующи х препаратов, используемых при проведении ряда рыбоводных мероприятий, в частности, к снятию производственной необходимости, при передозировке или других негативных проявлениях действия анестетиков. Известны способы анестезии рыб, предусматривающие применение широкого спектра фармакологических средств: местных анестетиков (Schramm H.L., Black David J. Anecthesia and surgical proctadures for implanting Radio transmittersinro grass carp // Progr. fish-cult, 1984, 45, 3, p.185 - 190; Никоноров С.И., Климонов В.О. Снижение уровня обмена веществ у рыб под действием гидрохлорида хинальдина // Рыбное хозяйство. - М., 1983. - №8. - С.43; Рывлина И.В. Биологическое действие и последствие применения анестезирующих ве ществ при транспортировке рыб // Автореф. дис. ... канд. биол. наук. - М., 1985. - С.23), нейролептиков (Фурдуй Ф.И., Хайдарлиу С.Х., Штирбу Е.И., Крепис О.И., Кракатица В.В. Способ проведения рыбоводных операций с производителями рыб // А.с. СССР №1117112, кл. A01K61/00, 1983) и транквилизаторов (Зиньковский О.Г., Зиньковский В.Г., Потрохов А.С. Способ анестезии рыб // Заявка СССР №4916134/13 (019290) кл. A01K61.00, 1992 (прототип)). Общим для всех эти х препаратов является то, что для анестезии рыб применяются вещества направленного действия на центральную нервную систему. Побочным эффектом действия всех этих веществ является снижение интенсивности сердечной деятельности и количества дыхательных движений жаберного аппарата. При передозировке анестезирующих препаратов, а также при низком содержании кислорода в воде этот побочный эффект может представлять угрозу для жизни рыб. Задача, на решение которой направлено изобретение, заключается в создании способа быстрого снятия анестезирующего и обездвиживающего эффекта применяемых в рыбоводстве нейролептиков, их седативного действия на центральную нервную систему рыб. Причинно-следственная связь между существенными признаками заявляемого изобретения и получаемым техническим результатом заключается в следующем: за счет внесения в воду вещества, стимулирующего активность нервной системы рыб, снижается обездвиживающий, анестезирующий и седативный эффект при передозировке анестетиков или в случае нарушения нормы реакций рыб на действие анестетика, а также после получения половых продуктов от производи гелей и длительной транспортировки рыб. Существенным является и то, что при внесении коразола в воду поступление его в организм рыб через слизистый эпителий жаберного аппарата происходит очень быстро, желаемый фармакологический эффект наступает через 2 - 3 минуты. Кроме того, способ, предполагающий выдерживание рыб в растворе предложенного вещества позволяет провести быструю обработку большого количества мелких рыб (сеголеток, двухлеток), которым затруднительно проводить внутримышечные инъекции. Сущность изобретения заключается в том, что предложенное нами вещество коразол (1,5пентилентетразол) оказывает действие противоположное большинству анестетиков (феназепам, аминазин, амизил, пропоксат и др.), а именно возбуждает рецепцию g-аминомасляной кислоты и является конкурентным медиатором Clканалов и каналов K+,Na+-транспорта, способный снять действие применяемых анестетиков. При исследовании фармакологической активности ряда анестетиков: феназепама (Заявка СССР №4916134/13 (019290), кл. A01K61/00, 1992), аминазина и амизила, хинальдина и пропоксата, производных барбитуровой кислоты было установлено, что у рыб все перечисленные препараты обладают противосудорожной, антикоразоловой активностью. Нами был изучен механизм, объясняющий причины конкурентного действия коразола по отношению к вышеперечисленным препаратам, применяемым для анестезии рыб. Установлено, что у рыб, как и у высших (теплокровных) животных существует рецепция g-аминомасляной кислоты (НАМК). Наши данные подтверждаются исследованиями (Mallzia L.A., (Mallzia L.A., Tunhiclift Godfrey. Uptake pf gaminobutyric acid by Catfish Braln // Comp. Bichem. and Physiol., 1987, 1, p.37 - 40), проведенными на другом семействе рыб. Установлено, что коразол, с одной стороны, и производные бенздиазепина, производные барбитуровой кислоты, местные анестетики и другие вещества, применяемые для анестезии рыб, с другой стороны оказывают противоположное действие, возбуждая и угнетая ГМК-рецепцию, как конкуретные медиаторы Clканалов и транспорта K+ и Na+ в нервной ткани. Данный факт послужил причиной для исследования способности снятия анестезирующего и обездвиживающего эффекта анестетиков посредством применения коразола. Известно, что 50-процентная летальная доза феназепама соответствует 25 - 35мг/л на 1кг живого веса рыбы, что в 10 раз превосходит концентрацию, при которой наблюдается первичный фармакологический эффект, однако, если применить коразол в концентрации 100мг/л на 1кг живого веса, то рыбы без явного фармакологического эффекта могут получить дозы в десятки раз превосходящие Cl50 и после перенесения в чистую воду рыбы остаются живые и без признаков интоксикации. Способ осуществляется следующим образом: исходным является 10% раствор коразола. Коразол может вноситься в воду, где находятся рыбы до конечной концентрации 100мг/л на 1кг живого веса рыбы. Следует отметить, что активация работы жаберного аппарата при поступлении коразола через воду происходит достаточно быстро (через 2 - 3мин) после внесения препарата. Приведенная выше дозировка коразола применяется в том случае, когда необходимо быстро и радикально активизировать активность дыхания и кровообращения у рыб, то есть при значительной передозировке веществ анестетиков. При отсутствии угрозы жизни рыб со стороны действия анестезирующих ве ществ антидот применяется в меньших дозах (50мг/л на 1кг живого веса). Применение способа поясняется следующими примерами: Пример 1. Для перевозки 2х-леток белого толстолобика в качестве анестетика применяли аминазин в концентрации 0,3мг/л на 1кг живого веса рыб. За 10мин до внесения рыб в естественный водоем в живорыбную машину вносится коразол до конечной концентрации 50мг/л на 1кг живого веса и увеличивается интенсивность аэрации живорыбной машины. Затем рыбы переносятся в водоем с нормальной частотой жаберного дыхания и не дезорганизованным поведением, что уменьшает возможность выедания их хищниками. Пример 2. Для быстрого обездвижения производителей черного амура во время получения половых продуктов помещают в носилки с водой, содержащей 5мг/л феназепама. По мере получения икры рыб вынимают из раствора и помещают в проточную воду. В результате последние производители дольше находились в растворе анестетика и получили большую дозу препарата. В проточной воде рыбы практически неподвижны, дыхательные движения жабр почти незаметны. Для устранения угрозы их жизни в воду, где находятся рыбы, вносится 10% ный раствор коразола из расчета 1мл раствора на 1л воды, на 1кг живого веса производителей. Примеры приведены в отношении черного амура и белого толстолобика как рыб, которые соответственно наиболее и наименее чувствительны к действию анестезирующи х веществ.