Середовище поживне для культивування мікоплазм та ахолеплазм

Середовище поживне для культивування мікоплазм і ахолеплазм, що містить панкреатичний гідролізат рибного борошна, сухий дріжджовий 3 41971 4 виявляти ріст тих видів мікоплазм, що ростуть на щем додають пеніцилін 10000 ОД/см3 і 1 %- вий рідкому культуральному середовищі без опалесрозчин ацетату талія 10см3/дм3. ценції та помутніння. Приклад 1 Середовище поживне, що пропонується, вигоУ пробірки та на чашки Петрі із запропоноватовляється з сертифікованої сировини і забезпеним поживним середовищем висівали по 0,25 см3 чує ріст мікоплазм та ахолеплазм. Окрім того, пе(10-100 КУО) суспензії тест-культур Mycoplasma реваги запропонованого середовища в тому, що orale АТСС 23714, Acholeplasma laidlawii ATCC воно швидко готується, складається з невеликої 23206, Mycoplasma gallisepticum АТСС 19610, Myкількості сертифікованих компонентів та містить в coplasma synoviae ATCC 25204, Mycoplasma hyсвоєму складі реверсний індикатор феноловий orhinis ATCC 17981 та Mycoplasma arginini G 230. червоний водорозчинний. Завдяки індикатору сеПоживне середовище до виконання досліду мало редовище набуває червоно-рожевого кольору. рожевий колір. В якості контролю залишали незаМікоплазми розподіляються на дві групи одна сіяні пробірки з рідким, напіврідким та чашку Петрі з яких ферментує глюкозу, в результаті чого рН з щільним поживним середовищем. Інкубували середовища зміщується в кислу сторону і колір дослідні і контрольні пробірки і чашки Петрі в терсередовища змінюється на жовтий. Інша група мостаті за температури 37°С. мікоплазм гідролізує аргінін в результаті чого рН Через 24-72 год інкубації в пробірках з рідким і середовища зміщується в лужну сторону і колір напіврідким поживним середовищем засіяних тестсередовища змінюється на малиновий. Цей факт культурами Acholeplasma laidlawii ATCC 23206 дає змогу візуально за короткий термін дослідженMycoplasma synoviae ATCC 25204, Mycoplasma ня виявляти ріст даних мікроорганізмів і зокрема hyorhinis ATCC 17981 і Mycoplasma gallisepticum тих видів, ріст яких візуально без індикатора виATCC 19610 спостерігали зміну кольору поживного явити не можливо. середовища з рожевого на жовтий. В пробірках з Складовими цього середовища (г/дм3) є: культурами Acholeplasma laidlawii ATCC 23206 та панкреатичний гідролізат рибного бороMycoplasma gallisepticum ATCC 19610 окрім того шна 18,0 відмічали його помутніння. В пробірках з напіврідглюкоза 1,0 ким середовищем по ходу уколу спостерігали L- аргініну моногідрохлорид 0,1 утворення димчастої доріжки. На чашках Петрі сухий дріжджовий екстракту 5,0 спостерігали формування дрібних характерних натрію бікарбонат 0,8 колоній у вигляді не збитого «зажареного яйця» та феноловий червоний водорозчинний 0,015 зміну кольору поживного середовища з рожевого При виготовленні напіврідкого та щільного пона жовтий на місці формування колоній. Контроживного середовища додають агар мікробіологічльні пробірки та чашка Петрі з поживним середоний відповідно 3,0 г/л і 11,2 г/л. вищем залишились без змін його кольору. Під час виготовлення поживного середовища Через 24-48 год інкубації в пробірках з рідким і для культивування мікоплазм та ахолеплазм пенапіврідким поживним середовищем засіяних тестредбачає почергове додавання та розчинення всіх культурами Mycoplasma orale ATCC 23714 і Myкомпонентів в дистильованій воді, кип'ятіння проcoplasma arginini G 230 відмічали зміну кольору тягом 1,5-2 хвилин і фільтрування через ватний поживного середовища з рожевого на яскравофільтр у скляні флакони. Стерилізують поживне малиновий. В пробірках з напіврідким середовисередовище в автоклаві за температури 115 °С щем по ходу уколу спостерігали утворення димчапротягом ЗО хвилин. Кінцева концентрація амінностої доріжки. На чашках Петрі спостерігали форго азоту поживного середовища повинна становимування дрібних характерних колоній у вигляді ти 120-140 мг %, рН - 7,4-8,0. Перед використан«соска» та зміну кольору поживного середовища з ням до поживного середовища додають 20 % рожевого на яскраво-малиновий на місці формусироватки крові коня нормальної інактивованої вання колоній. Контрольні пробірки та чашка Петрі для бактеріологічних поживних середовищ, що з поживним середовищем залишились без змін обумовлює його достатню поживність для культийого кольору. вування мікоплазм. Напіврідке та щільне поживне Середовище поживне для культивування місередовище спочатку розплавляють на водяній коплазм та ахолеплазм може знайти застосування бані, а після його охолодження до температури 45в лабораторіях ветеринарної медицини при діаг56 °С в стерильних умовах додають 20 % сироватностичних дослідженнях, а також на біологічних ки крові коня нормальної інактивованої для бактепідприємствах, які виготовляють імунобіологічні ріологічних поживних середовищ. Якщо середопрепарати та для контролю якості біологічних превище використовують для ізоляції мікоплазм та паратів за показником «Контамінація мікоплазмаахолеплазм із патологічного матеріалу, то одночами». сно з сироваткою крові коня у флакон з середови Комп’ютерна верстка Г. Паяльніков Підписне Тираж 28 прим. Міністерство освіти і науки України Державний департамент інтелектуальної власності, вул. Урицького, 45, м. Київ, МСП, 03680, Україна ДП “Український інститут промислової власності”, вул. Глазунова, 1, м. Київ – 42, 01601