Спосіб вирощування ентомофагів

Изобретение относится к области сельского хозяйства, в частности, к отрасли искусственного выращивания насекомых для целей биологической борьбы с фитофагами. В практике биологической защиты растений от вредных насекомых известны способы выращивания энтомофагов и биолабораториях на яйцах насекомых-хозяевах. Однако, выращенные этим способом энтомофаги не заражают вредителей на гусеничной стадии. Известна, периодически, сравнительно высокая эффективность природных популяций энтомофагов, заражающих гусениц фито фагов [1]. Однако массовое их выращивание для целей биологического контроля вредителей не налажено из-за отсутствия эффективных способов выращивания энтомофагов. Интенсификация сельскохозяйственного производства и угроза тотального использования химических средств вынуждает искать альтернативные пути ограничения численности вредных насекомых, в частности, биологического контроля. Известен способ выращивания энтомофагов, осуществляемый путем подкормки имаго стимуляторами из класса силатранов [2]. Однако использование этого способа трудоемко, малоэффективно и сопряжено с большим расходом труда и средств. Наиболее близким техническим решением, выбранным в качестве прототипа, является способ выращивания полезных насекомых с использованием 5-пиперединометил-6метилурацила (БЕС-221), метилурацила (МТ) и урацила (УРЛ), в качестве стимуляторов добавляемых к питательному субстрату [3]. Способ заключается в выращивании полезных насекомых, включая энтомофагов, которых подкармливали стимуляторами совместно с водным раствором 10% сахара, Оптимальная концентрация стимуляторов составила 0,005 - 0,002%. При этом полученный технический результат заключается в увеличении ряда важных показателей продуктивности энтомофагов: плодовитость самок на 27 - 30%, длительность жизни самок, а также на 8 - 10% возрастало количество самок, заражавших яйца насекомых-хозяев. Однако известные способы имеют следующие недостатки: 1. Узкий круг насекомых, выращиваемых с использованием силатранов. 2. Использованием химических соединений, что не исключает возможность порочных действий. 3. Использование трудносинтезируемых соединений из класса нуклеиновых кислот, синтезируемых для медицинских целей. 4. Невысокая технологичность препаративных форм стимуляторов - смачивающиеся порошки, что затрудняет их приготовление, в следствие чего не исключается передозировка препаратов. 5. Недостаточно высокая их эффективность, что не позволяет достаточно полно реализовать потенциальные возможности организма энтомофагов. 6. Не установлена жизнеспособность и эффективность энтомофагов в полевых агроценозах для ограничения вредности фитофагов. В основу изобретения поставлена задача увеличения продуктивности способа, выражающегося в повышении длительности жизни и плодовитости самок, выживаемости, а также заражающей способности энтомофагов, насекомых-хозяев, как лабораторных, так и природных популяций в агроценозах. Поставленная задача достигается тем, что в способе выращивания энтомофагов, заражающих гусениц вредных видов, о тродившихся имаго, откармливают водным раствором амитозина, совместно с углеводной подкормкой. При этом, оптимальные концентрации амитозина составляют: 0,025 - 0,006%. В водный раствор амитозина добавляют сахар 10% ной концентрации. Амитозин препарат растительного происхождения. До настоящего времени применяется в медицине и ветеринарии (4). Препарат не токсичен для теплокровных и человека, ЛД50 для кроликов и крыс 1150 1700мг/кг. Сопоставительный анализ заявляемого решения с прототипом показывает, что заявляемый способ отличается от известного тем, что обосновывается способ выращивания четырех распространенных энтомофагов, при этом введение в пищевой рацион амитозина позволяет получать высокожизнеспособные популяции дочерних поколений, интенсивно заражающих как лабораторных хозяев, так и природные популяции фитофагов. Таким образом, заявляемый способ соответствует критерию изобретения "новизна". Способ обосновывается при выращивании в биолабораториях четырех видов широко распространенных энтомофагов. L.Microdus rufipes Ness. - паразит гусениц яблонной плодожорки и других листоверток плодового сада, в дальнейшем именуется микродус. 2. Elasmus albipennis L. - паразит гусениц яблонной плодожорки и других листоверток плодового сада - элазмус. 3. Apanteles glomeratus L. - паразит гусениц капустных белянок и боярышницы - апантелео. 4. Lemoohagus curtus Townes. - паразит личинок пьявиц - лемофагус. Насекомых разводили в биолаборатории при оптимальных условиях температуры (21 - 24°C), влажности воздуха (65 - 75%) и фотопериода. Микродуса разводили в биолаборатории в энтомологических садках на гусеницах яблонной плодожорки. Элазмус также выращивали на гусеницах яблонной плодожорки. Апантелео - на гусеницах капустной белянки. Лемофагус на личинках пьявицы. Пример 1. Для осуществления способа использовали гусениц яблонной плодожорки, собранных в природе, или выращенные в лаборатории. Гусениц помещали в деревянные садки, обтянутые марлей, использовали не менее 500 гусениц плодожорки. В оптимальных условиях, в садки подсаживали имаго микродуса, где на ватных тампонах или полосках из пенопласта предлагалась диета для имаго, состоящая из пяти различных концентраций амитозина: 0,05; 0,025; 0,012; 0,006; 0,03%. Каждая в смеси 10% - ным раствором сахара. По единой методике выращивали энтомофагов по способу-прототипу, с использованием для подкормки 5пиперединометилен-6-метилурацил (БЕС-221). Были также варианты, где энтомофагам предлагали только 10% - ный раствор сахара и отдельно водопроводную воду. В каждом варианте, включая отдельные градации концентрации амитозина, было не менее 60 - ти гусениц плодожорки, на каждую из которых приходилось не менее пяти самок микродуса. Эффективность способа оценивали по основным, общепринятым хозяйственным и биологическим показателям, существующим в отрасли, сравнивая при этом с показателями способа прототипа. После завершения развития каждого из шести дочерних поколений микродуса, определяли основные показатели продуктивности. В табл.1 представлены обоснованные оптимальные и граничные концентрации амитозина для подкормки имаго микродуса. Как видно, по всем показателям, выращивание микродуса по предлагаемому способу существенно превосходит показатели способапрототипа в диапазоне концентраций: 0,025 0,006%. В табл.1 показатель достоверности Р сравнивается прототип с цифровыми значениями амитозина. Особенно существенно плодовитости паразита и уровня зараженности гусениц плодожорки. Пример 2. В экспериментах использовались гусеницы яблонной плодожорки и мельничной огневки, которые заражались элазмусом. Как и в примере 1, диета для подкормки имаго состояла из тех же компонентов и в той же концентрации. Полученные результаты сравнивали со способомпрототипом. В табл.2 приведены данные, иллюстрирующие результаты экспериментов, при выращивании элазмуса на гусеницах яблонной плодожорки. Отчетливо видно достоверно существенное превышение по всем сравниваемым показателям продуктивности паразита, выращенного по предлагаемому способу. Судя по предоставленным данным, оптимальная концентрация амитозина составляет 0,025 - 0,006%. Существенным отличием предлагаемого способа является возможность выращивания элазмуса на гусеницах мельничной огневки, широко известного лабораторного хозяина ряда энтомофагов (трихограмма, габробракон). Как видно из данных табл.3, достигн ута принципиальная возможность видения культуры элазмуса по предлагаемому способу, с достижением высокой эффективности по сравнению с прототипом. Эффективность выращивания элазмуса в других вариантах, включая и прототип, настолько низка, что делает эти способы непригодными для выращивания энтомофага. Пример 3. Эксперименты проводились с использованием апантелеса, которого выращивали по предлагаемому способу на гусеницах капустной белянки. Использовалось 450 гусениц белянки выращиваемых в садках, где и проходило заражение их паразитом. Опыты проводили в оптимальных условиях. В табл.4 приведены данные по продуктивности апантелеса, выращенного по предлагаемому способу. Как и для други х видов энтомофагов, оптимальная концентрация амитозина составляет 0,025 - 0,006%. Именно в этих пределах достигнута максимальная продуктивность паразита. Часть популяций апантелеса выращивалась с целью накопления, для последующей колонизации на капустное поле для установления возможности использования выращенного по предлагаемому способу паразита для контроля численности природных популяций белянок на капусте. Пример 4. В полевом эксперименте, на посадках капусты сорта Амагер оценивали эффективность апантелеса, выращенного по предлагаемому способу. Выпуск энтомофага проводили против второго поколения. белянок из расчета 10тыс. особей на га в три приема. Площадь каждого варианта 0,5га, контрольного 0,01га, для сравнения использовали апантелес, выращенный по способу-прототипу. Результаты экспериментов представлены в табл.5. Выращенный по предлагаемому способу апантелес на много эффективнее прототипа. Биологическая эффективность заявляемого способа составила 66,7%, в то время как прототипа на 23,7% меньше. Аналогичные данные и по другим сравниваемым показателям, что и иллюстрируют данные табл.5. Пример 5. Эксперименты проводились с использованием демофагуса, которого разводили по предлагаемому способу на личинках синей пьявицы. Использовались 350 личинок пьявицы выращиваемой в садках из марли, где происходило заражение паразитом. Опыты проводились в оптимальных условиях. В табл.6 приведены данные, характеризующие достигнутый те хнический результат, оптимальные и граничные концентрации амитозина в способе. Оптимальная концентрация амитозина при выращивании лемофагуса составила 0,025 0,006%. Использование предлагаемого способа выращивания паразитов гусениц, обеспечивает по сравнению с существующими способами ряд преимуществ, что иллюстрируют данные табл.7. Достигнуто преимущество по всем сравниваемым показателям биологического, хозяйственного и технологического характера.