Спосіб моделювання абсцесу печінки

Изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальной хирургии и предназначено для моделирования у лабораторных животных абсцесса печени с целью последующей отработки новых методик хирургического и местного его лечения. Известен способ моделирования воспалительных заболеваний желчного пузыря [1], основанный на перевязке пузырного протока с последующим введением в желчный пузырь каких-либо инородных тел или патогенных микроорганизмов. При этом острое гнойное воспаление протекает более активно при введении гранул полиметилсилоксанового сорбента, предварительно инкубированных в суточной бульонной культуре белого стафилококка или сине-гнойной палочки. При этом в печени может возникнуть процесс ассептического (реактивного) воспаления, границы которого определить практически невозможно. Недостатком этого способа является отсутствие возникновения при сохранности желчного пузыря локального гнойника в печени. В тех случаях, когда имеется несостоятельность (перфорация) задней стенки желчного пузыря, может возникнуть локальное гнойное воспаление паренхимы печени. Наиболее близким и выбранным в качествен прототипа является способ моделирования холангитических абсцессов печени, получаемых при моделировании острого гнойного холангита [2], при котором животным производят верхнесрединную лапаротомию, выполняют стандартную холецистектомию, осуществляют перевязку лигатурой терминального отдела холедоха, а через культю пузырного протока в холедох вводят различные микробные взвеси. Указанный способ не лишен недостатков, заключающихся в том, что часть животных погибает от септических осложнений и прогрессирующего гнойного холангита на фоне механической желтухи, а у остальных формируются множественные мелкоочаговые холангитические абсцессы по ходу желчных протоков. Известные способы не обеспечивают моделирование изолированного гнойного полостного образования в печеночной ткани, необходимого для отработки различных методов лечения абсцессов печени. В основу изобретения поставлена задача усовершенствования способа моделирования абсцесса печени, в котором подведением к ложу пузыря дренажной трубки для введения микробной взвеси, обеспечивается инфицироваиие собственно печеночной ткани, за счет чего создается модель изолированного абсцесса печени, необходимая для последующей отработки новых методик хирургического и местного лечения. Поставленная задача решается тем, что в способе моделирования абсцесса печени, заключающемся в проведении животному верхнесрединной лапаротомии, холецистэктомии и введении микробной взвеси, согласно изобретению, к ложу пузыря фиксируют дренажную трубку для введения микробной взвеси, края печени сшивают над дренажем, а другой конец его выводят наружу над кожей. Использование для введения микробной взвеси дренажной трубки, конец которой фиксируют к ложу удаленного желчного пузыря, обеспечивает подведение инфицирующей микробной взвеси непосредственно в рану печени, что дает возможность создания изолированного внутрипеченочного абсцесса с заранее заданной локализацией и бактериальной флорой. Выведение дренажной трубки наружу позволяет производить забор бактериального материала для исследования и подводить лекарственные препараты непосредственно к очагу ин фекции. Способ моделирования абсцесса печени осуществляют следующим образом. Лабораторному животному (кролику) после соответствующей премедикации под внутривенным либо внутримышечным наркозом производят верхне-срединную лапаротомию и стандартную холецистэктомию. Известно, что печень покрыта брюшиной и капсулой, поэтому после холецистэктомии в ложе пузыря формируется зона, лишенная брюшинного покрова и фиброзной капсулы, и "обнажается" собственно печеночная ткань. Незначительное кровоснабжение пузыря позволяет произвести гемостаз кратковременным прижатием тампона. К ложу пузыря подводят дренажную тр убку, которую фиксируют нерассасывающейся монофиламентной нитью на атравматической игле. Края ложа сводятся над дренажем такой же нитью. Другой конец дренажа, снабженный заглушкой, через контрапертур у в правом подреберье вводят под кожу и через подкожный "тоннель" проводят на заднюю поверхность шеи животного (чтобы исключить выгрызание, где и фиксируют к коже шелком. Через 24 часа после операции по дренажу вводят культур у (смесь синегнойной палочки и золотистого стафилококка в количестве 10 микробных тел. Через 3 суток в печени формируется полостное гнойное образование абсцесс печени. Пример. Кролику породы серая шиншилла весом 3,5кг после премедикации растворов димедрола 2% 0,1мл, атропина 0,1% - 0,1мл и промедола 2% - 0,1мл вводились в ушн ую вену 20мг кетамина и 100мг оксибутирата натрия. При явлениях пробуждения животного повторно вводили половинную дозу. После выбривания передней брюшной стенки и трехкратной обработки ее 3% йодом, с соблюдением всех правил стерильности произведена верхне-срединная лапаротомия. Желчный пузырь мобилизован и удален от шейки с раздельной перевязкой пузырного протока и артерии. Гемостаз ложа пузыря, представляющего собой рану печени 2,7 ´ 1,0 ´ 0,8 путем тампонирования марлевой салфеткой на 2 минуты. В ложе пузыря уложена перфорированная пластиковая трубка диаметром 8мм, длиной 300мм, с заглушкой на наружном конце. Края раны печени над трубкой сведены непрерывным швом с использованием нерассасывающейся монофиламентной нити на атравматической игле. Наружный конец трубки проведен через мягкие ткани боковой стенки живота в области правого подреберья и далее по подкожному тоннелю на заднюю поверхность шеи животного, где фиксирован к разрезу кожи шелком. Лапаротомная рана послойно зашита наглухо. Через сутки в стерильных условиях по трубке введен 1,1мм микробной взвеси, содержащей культуру клинических штаммов синегнойной палочки и золотистого стафилококка количеством по 0,5 ´ 108 микробных тел. Через сутки после заражений состояние кроликов не претерпело существенной динамики. Показатель частоты пульса и дыхания не изменились, температура тела оставалась в пределах нормы. В клиническом анализе крови отмечен рост общего числа лейкоцитов до 12,9 ´ 109 (исходное - 7,2 ´ 109), со сдвигом формулы влево. На третьи сутки после заражения - животное адинамично, отказывается от пищи, температура тела повышена до 39,2°C, в анализе крови лейкоциты до 18,7 ´ 109. Дренажная трубка заполнена гноевидным содержимым, при бактериологическом исследовании которого высеяна ассоциация введенных возбудителей до 1,6 ´ 1012 микробных тел в 1мл взвеси. При УЗИ печени в зоне внутреннего конца трубки визуализируется округлой формы полость размерами 2,6 ´ 1,7см с горизонтальным уровнем жидкости в ней. Рентгенологически (фистулография с верографином) подтверждено наличие внутрипеченочного абсцесса тех же размеров. С пятых суток - состояние животного по типу септического: смерть наступила к 8 - м суткам. На вскрытии подтверждено наличие внутрипеченочного абсцесса с признаками диссеминации: вторичные очаги инфекции обнаружены в легком и перикарде. Заявляемый способ моделирования позволяет сравнительно просто в эксперименте создать модель изолированного абсцесса печени с заранее заданными локализацией и бактериальной флорой, с возможностью наблюдения за течением процесса в динамике и исходов в зависимости от метода хирургического лечения или применения определенных лекарственных препаратов.