Спосіб одержання полімерної мембрани для адсорбції низькомолекулярних біоорганічних сполук

Спосіб одержання полімерної мембрани для адсорбції низькомолекулярних біоорганічних сполук, здійснюваний за принципом молекулярного U 2 (19) 1 3 56278 цею в мембрані, але не адсорбцію креатиніну із розчинів, і не забезпечує використання мембрани в тест-системі визначення креатиніну. Завданням пропонуємої корисної моделі є розробка способу одержання полімерної мембрани за принципом молекулярного імпринтингу для адсорбції креатиніну, яка забезпечує використання її в тест-системі визначення креатиніну. Поставлена задача вирішується тим, що за способом одержання полімерної мембрани для адсорбції низькомолекулярних біоорганічних сполук, здійснюваного за принципом молекулярного імпринтингу, за яким змішують пластифікатор ОУА із зшивачем ТЕДМ і до цієї суміші додають пороутворювач ПЕГ ММ20000, ініціатор полімеризації кеталь, розчинник ДМФ, матрицю, функціональний мономер з подальшим перемішуванням і розчиненням одержаної суміші та проведенням синтезу полімеризацією при опроміненні УФ-світлом згідно запропонованої корисної моделі беруть як матрицю - креатинін і як функціональний мономер (ФМ) речовину, вибрану із групи, яка включає метакрилову кислоту (МАК), ітаконову кислоту (ІК), 2акриламідо-2-метил-1-пропансульфонову кислоту (АПСК), витримуючи мольне співвідношення матриці і ФМ 1:2 відповідно. Спосіб одержання і застосування полімерної мембрани наведено в прикладі 1. Суть корисної моделі підтверджується наведеними в таблиці прикладами мембран, які синтезовані з різними функціональними мономерами. Приклад 1 Змішують 113мг пластифікатора ОУА і 641мг зшивача ТЕДМ, додають 46мг функціонального мономера МАК, 20мг матриці креатиніну, 120мг пороутворювача ПЕГ MM20000, 800мг розчинника ДМФ і суміш розчиняють протягом 2-3год. при те 4 мпературі 80°С в ультразвуковій бані Elmasonic S15H. Полімеризацію реагуючих компонентів проводили в присутності 4мг ініціатора кеталю при опроміненні УФ-світлом за допомогою люмінісцентної лампи (Philips TL8W/08*4) при довжині хвилі =365нм протягом 30-40хв. Одержані мембрани просушують на повітрі, екстрагують метанолом на протязі 8год, потім промивають дистильованою водою для видалення з поверхні мембрани залишків мономерів, ініціатора та матриці (креатиніну). Плівку мембрани сушать на повітрі під легким гнітом. Для використання одержаних мембран в якості колориметричних тест-систем визначення креатиніну зразки мембран розміром (1×1)см занурюють у водні розчини креатиніну концентрації від 250 до 2000мкМ на 3год. Далі зразки промивають сумішшю води з ацетонітрилом (95:5)% об., рештки якої видаляють з поверхні мембран фільтрувальним папером. Надалі мембрани обробляють сумішшю водних розчинів пікринової кислоти (2%й) та їдкого натрію (10%-й) у співвідношенні 3:1 відповідно. Адсорбований креатинін під дією пікринової кислоти в лужному середовищі забарвлює мембрани в помаранчево-червоний колір. Інтенсивність забарвлення мембрани пропорційна концентрації адсорбованого креатиніну. Відносну інтенсивність забарвлення визначали за алгоритмом програми Bio-Rad "Quantity One" програмного забезпечення Віо-Rad Laboratories, Inc., USA. В таблиці наведені одержані величини інтенсивності забарвлення (І, в відносних одиницях) креатинін-селективних мембран, синтезованих з різними функціональними мономерами. Інтенсивність Функціональний Співвідношення забарвлення І, мономер матриця: ФМ, молі відн.од. № п/п Матриця 1 Креатинін МАК 1:2 170 2 Креатинін ІК 1:2 150 3 Креатинін АПСК 1:2 116 4к Креатинін АПСК 1:1 34 5к Креатинін МАК 1:3 Прототип Біотоксин AM 1:2 Одержані дані свідчать, що пропонуємий спосіб одержання мембрани забезпечує ефективну адсорбцію креатиніну із фізіологічних розчинів (приклади 1, 2, 3). Зменшення концентрації ФМ в мембрані (приклад 4к) не сприяє формуванню сайту оптимального розміру для забезпечення максимальної адсорбції креатиніну. Але і збільшення концентрації ФМ (приклад 5к) веде до втрати механічної міцності полімерної мембрани. Таким чином, згідно запропонованого рішення розроблено принципово новий спосіб одержання креатинін-селективних полімерних мембран, які Адсорбція креатиніну Висока сорбційна здатність Висока сорбційна здатність Задовільна сорбційна здатність Низька адсорбція креатиніну Мембрана крихка Креатинін не адсорбується забезпечують адсорбцію креатиніну та його визначення у фізіологічних розчинах за інтенсивністю забарвлення мембран. Пропонуємі мембрани є основою простих, ефективних і недорогих колориметричних тест-систем також і для позалабораторного застосування для експрес-визначення креатиніну. Це особливо важливо для медицини, оскільки концентрація креатиніну є показником стану організму, вона свідчить про можливі патологічні зміни в органах. Література: 5 56278 1. Hsiue G., Lu P., Chen J. Multienzymeimmobilized modified membrane for an amperometric creatinine biosensor // Journ. Appl. Pol. Sci. 2004. V.92. №5. P.3126-3134. 2. Benkert A., Scheller F., Schlosser W. at all. Development of a creatinine Elisa and an antibodybased creatinine sensor with a detection // Analytical Chem.2000. V.72. №5. p.916-921. Комп’ютерна верстка А. Рябко 6 3. Rasmussen C., Andersen J., Z-Christiansen B. Impoved performance of the biosensor for the determination of creatinine // Analytical Letters. 2007. V.40. №1. P.39-52. 4. Сергеева Т.А., Пілецька О.В., Бровко О.О. та ін. Афлатоксин-селективні мембрани на основі акрилатполіуретанових напів-ВПС // Укр.біохім.ж. 2007. Т.79. №5. С.109-115. Підписне Тираж 26 прим. Міністерство освіти і науки України Державний департамент інтелектуальної власності, вул. Урицького, 45, м. Київ, МСП, 03680, Україна ДП “Український інститут промислової власності”, вул. Глазунова, 1, м. Київ – 42, 01601