Спосіб адсорбційного очищення плазми крові і пристрій для його здійснення

1. Спосіб адсорбційного очищення плазми крові, який полягає у перфузії плазми через капсулу з адсорбентом з наступним поверненням перфузату у судинне русло пацієнта, який відрізняється тим, що плазму перфузують через наповнену фосфатноцелюлозним фільтром капсулу з просоченням його в капсулі 10% розчином кальцію хлориду при співвідношенні об'ємів капсули і розчину як 1:2-1:3, причому через капсулу з фосфатноцелюлозним марлевим фільтром пропускають фотоактивований 10% розчин кальцію хло C2 2 (19) 1 3 76247 4 елементу при природному надходженні його в оррівень його адсорбційної спроможності через обганізм головним чином у складі рослинної їжі, з межену здатність направлено коригувати фізикомолоком, водою і наступному всмоктуванні у тонхімічну активність вкладеного в капсулу багатошакій кишці властивою є взаємодія з уже фіксованим рового марлевого фосфатноцелюлозного фільтра, стронцієм у кістках, що сприяє накопиченню в орщо обмежує сферу клінічного застосування, особганізмі радіоактивного ізотопу стронцію при його ливо, за умов радіаційного забруднення довкілля надходженні з довкілля [3]. Небезпечність для оррадіоактивним стронцієм Sr90. ганізму вказаного явища очевидна в зв'язку з довПоставлене завдання вирішують тим, що у віготривалим періодом існування ізотопу 90Sr, період домому пристрої для адсорбційного очищення напіврозпаду якого складає 27,7 року [4]. Беручи плазми крові, який складається з пластикової капдо уваги відому здатність поліфосфатних сполук сули з вхідним і вихідним штуцерами, наповненої до зв'язування радіоактивного стронцію, а також адсорбентним фільтром у вигляді щільно укладеспорідненість кальцію і стронцію за хімічними і них шарів фосфатно целюлозної марлі, відповідно фізичними властивостями як елементів однієї до винаходу пристрій додатково оснащений дже(другої) групи елементів періодичної системи елерелом ультрафіолетового випромінювання у виментів Д.І.Менделєєва (підгрупа лужноземельних гляді встановленої вертикально розрядної лампи елементів), слід визнати доцільним попереднє низького тиску з довжиною хвилі випромінювання навантаження детермінантних груп полімерних mах=253,7нм, на яку коаксіально надіта прозора молекул фосфату целюлози іонами кальцію, надля ультрафіолетових променів двохстінна тороприклад, шляхом просочення фільтру у вигляді подібної форми наповнена стерильним 10% розфосфатно целюлозної марлі розчином кальцію чином кальцію хлориду кювета з принаймні одним хлориду. - вихідним штуцером, причому джерело ультрафіНаведені міркування дають підстави сподіваолетового випромінювання разом з коаксіально тися, що адсорбент на поліфосфатній основі за надітою кюветою розміщені у світлозахисному умов попереднього його навантаження фотоактикорпусі на штативі. вованим кальцієм набуватиме підвищену здатність Пристрій (Фіг.1, 2) складається з пластикової до селективного зв’язування стронцію, а саме його капсули 1 з вхідним і вихідним штуцерами 2, 3 радіоактивного ізотопу Sr90. При вирішенні технічвідповідно, наповненої адсорбентом 4 у вигляді ного завдання було взято до уваги й те, що важлищільно укладених шарів фосфатноцелюлозної вим чинником впливу на адсорбційну здатність марлі, джерела ультрафіолетового випромінювансубстрату є ультрафіолетове випромінювання ня - розташованої вертикально розрядної лампи 5 [5,6], оскільки при взаємодії з речовиною кванти низького тиску з довжиною хвилі випромінювання ультрафіолетового випромінювання здатні індукуmах=253,7нм, на яку коаксіально надіта двохстінна вати в ній певні фізичні процеси, у тому числі тороподібної форми кварцова кювета 6, оснащена пов'язані з міграцією внутрішньо молекулярної принаймні одним, розташованим знизу вихідним енергії. Виходячи з наведеного, підвищення потештуцером 7, а розрядна лампа 5 разом з коаксіанціальної енергії хімічного зв'язку між атомами льно надітою кюветою 6 розміщені у світлозахискальцію і полімерами фосфату целюлози можна ному корпусі 8, який встановлено на штативі 9. досягти попереднім ультрафіолетовим опроміненСпосіб на основі використання запропонованям водного розчину кальцію хлориду від джерела ного пристрою здійснюють таким чином. Перед випромінювання з достатньою для забезпечення проведенням перфузії плазми крові на першому фотофізичної активації молекул енергією фотонів. етапі адсорбент 4 у вигляді фосфатноцелюлозної Поставлене завдання вирішують тим, що у вімарлі в пластиковій капсулі 1 просочують фотоакдомому способі адсорбційного очищення плазми, тивованим розчином хлориду кальцію. Для цього з який полягає у перфузії плазми через капсулу з дотриманням усіх правил асептики і антисептики адсорбентом з наступним поверненням перфузату вихідний штуцер 7 кварцової кювети 6 з 10% воду судинне русло пацієнта, відповідно до корисної ним розчином кальцію хлориду магістральною моделі плазму перфузують через наповнену фострубкою від стандартної трансфузійної системи фатноцелюлозним фільтром капсулу з просоченсполучають з вхідним штуцером 2 пластикової ням його в капсулі 10% розчином кальцію хлориду капсули 1, після чого вмикають джерело ультрафіпри співвідношенні об'ємів капсули і розчину як олетового випромінювання - розрядну лампу 5 і, 1:2 1:3, причому через капсулу з фосфатноцелюпереконавшись у її роботі, залишають увімкненою лозним марлевим фільтром пропускають фотоакна 5-6 хвилин для виходу на робочий режим її витивований 10% розчин кальцію хлориду, фотоакпромінювання. Далі через пластикову кювету 1 з тивацію якого здійснюють ex tempore кварцової кювети 6 пропускають фотоактивований опромінюванням від джерела - розрядної лампи 10% водний розчин кальцію хлориду, просочують низького тиску з довжиною хвилі mах=253,7нм у адсорбент 4 і встановлюють необхідну швидкість прозорій для ультрафіолетових променів кюветі в витікання розчину кальцію хлориду з пластикової проточному режимі при швидкості протікання 3капсули 1 в межах 3-4мл/хв., дотримуючись спів-1 відношення об'ємів капсули 1 і розчину в межах 4мл хв . Відомий пристрій для адсорбційного очищення 1:2 1:3. Після просочення адсорбенту 4 в пластиплазми, який складається з пластикової капсули з ковій капсулі 1 останню від'єднують від кварцової вхідним і вихідним штуцерами, наповненої адсоркювети 6 з фотоактивованим розчином кальцію бентним фільтром у вигляді щільно укладених хлориду, а розрядну лампу 5 вимикають. Просочешарів фосфатноцелюлозної марлі [2]. ний фосфатноцелюлозний адсорбент 4 у капсулі 1 Недоліком відомого пристрою є недостатній є готовий до застосування ex tempore за відповід 5 76247 6 ною технологією плазмосорбції шляхом перфузії зчин еталонного препарату в плазмі (50мл) перплазми крові через адсорбенту з наступним повефузували впродовж 30хв. через капсулу з фотоакрненням очищеного перфузату в судинне русло тивованим фосфатноцелюлозним адсорбентом, пацієнта. маса якого становила 23,6г. Другу частину еталонПриклад. Фосфатноцелюлозний адсорбент у ного препарату в плазмі (50мл) перфузували вигляді марлевої стрічки зважили на торсійній вазі впродовж 30хв. через капсулу з аналогічним адсоі щільно вклали всередину капсули. З дотриманрбентом, просоченим 10% розчином кальцію хлоням правил асептики і антисептики вихідний штуриду без його попередньої фотоактивації - контроцер кварцової кювети з 10% водним розчином кальне дослідження. Після завершення етапу льцію хлориду за допомогою магістральної трубки перфузії дослідний і контрольний адсорбенти від стандартної трансфузійної системи сполучили окремо спалили в муфельній печі, а радіоактивз вхідним штуцером пластикової капсули з адсорність в отриманій золі визначили за допомогою бентом. На встановлену вертикально на штативі і установки з малим фоном для вимірювання бетаприкриту світлозахисним кожухом розрядну лампу активності УМФ-1500 Μ [7, 8]. коаксіально розмістили наповнену 10% водним Радіоактивність золи спалених фосфатноцерозчином кальцію хлориду кварцову кювету і ввімлюлозних адсорбентів становила 43,3Бк і 29,6Бк у кнули розрядну лампу - джерело ультрафіолетодосліді й контролі - відповідно, а зв'язана з адсорвого випромінювання. Після 5 хвилин горіння, небентом радіоактивність у перерахунку на 1кг маси обхідних для стабілізації режиму випромінювання, становила 1,8 103Бк/кг у випадку застосування адсорбент просочували фотоактивованим 10% фотоактивованого адсорбенту, і 1,2 103Бк/кг - при розчином кальцію хлориду, встановивши спочатку просоченні адсорбенту розчином кальцію хлориду за допомогою затискача магістральної системи (на без його попередньої фотоактивації (контроль). З Фіг.не позначено) швидкість витікання розчину з наведених у таблиці даних видно, що адсорбційна пластикової капсули на рівні 4 мл/хв. Всього на спроможність фосфатноцелюлозного фільтра щопросочення адсорбенту пішло 120мл 10% розчину до зв'язування еталонного радіоактивного препакальцію хлориду, що при об'ємі капсули в 60см3 рату із вмістом 90Sr при проведенні плазмосорбції відповідає співвідношенню 1:2. Після завершення (таблиця) суттєво вища при попередньому просопросочення пластикову капсулу з адсорбентом ченні адсорбента в капсулі фотоактивованим 10% від'єднали від кварцової кювети з фотоактивоваводним розчином кальцію хлориду, а саме - на ним розчином кальцію хлориду, а розрядну лампу 47,5% порівняно з адсорбентом, просоченим невимкнули. На наступному етапі через капсулу з фотоактивованим розчином кальцію хлориду без обробленим фосфатноцелюлозним адсорбентом його попередньої фото активації. перфузували плазму крові, попередньо змішану із Наведений приклад вказує на доцільність застандартизованим розчином еталонного радіоакстосування запропонованого способу адсорбцій90 тивного препарату із вмістом Sr з відомою радіоного очищення плазми крові і пристрою для його активністю на рівні 737Бк/мл. здійснення як перспективної лікувальної технології Попередньо еталонний радіоактивний препаплазмосорбції в арсеналі засобів кваліфікованої рат розвели плазмою крові донора в 100 разів, медичної допомоги потерпілим за умов забрудвнаслідок чого активність ізотопу 90Sr у плазмі кронення радіоактивним стронцієм 90Sr довкілля і ві становила 7,37Бк/мл. Розведений еталонний проникнення його в організм. препарат розділили на дві рівні частини. Один роТаблиця Показники адсорбційної спроможності фосфатноцелюлозного адсорбенту Рівень елімінації Sr з плазми Радіоактивність золи фосМаса фосфатПоказник адсорбційної крові після плазмосорбції з фатноцелюлозного адсорно-целюлозного здатності фосфатно- застосу-ванням контрольного Серія бенту після перфузії плазадсорбенту в целюлоз-ного адсорбе- і дослідного – фото актими крові з еталонним капсулі, г нту щодо Sr, Бк/кг вованого адсорбенту в пласпрепаратом 90Sr, Бк тиковій капсулі, % Контроль 24,3 29,6 1,22 8,0 Дослід 23,6 43,3 1,82 11,8 Джерела інформації, які слід взяти до уваги: 1. Сорбция/БМЭ, изд. третье. - Μ., 1984, т.23. – С.-527-528. 2. Е.Д.Буглов, И.Н.Ермоленко, С.И.Довгалев и др./ Получение бесцитратной крови с применением фосфата целлюлозы.-Минск:Наука и техника, 1971.-300с. 3. А.Л.Ильин, А.Т.Иваненков. Радиоактивные вещества и раны. М., 1979. 4. Стронций/ БМЭ, изд. Третье.- М, 1985, т.24. – С.-322-324. 5. А.с.(СССР) №1706099. Способ получения биосорбента. Н.Д.Бех, В.В.Дем'яненко., Підвищення адсорбцій-ної спроможності фосфатноцелюлозного адсорбенту при просо-ченні його фото активованим розчином кальцію хлориду, Δ% 47,5 М.А.Андрейчин, С.М.Дем'яненко, В.В.Суздалева. 6. Пат. 44958 А, Україна. А61К33/42, 41/00, 47/26. Спосіб отримання сорбенту на основі фосфату целюлози // Н.Д.Бех, В.В.Дем'яненко., М.А.Андрейчин, Заявка №9852593, 07.05.99. Опубл. 15.03.2002, Бюл.№3. 7. Установка с малым фоном для измерения бета-активности УМФ-1500 М. Паспорт. 1 А2.809.005ПЭ. 1970. 8. Инструктивно-методические указания по контролю за радиоактивностью среды. Атомиздат. М., 1964.- 67с. 7 Комп’ютерна верстка Т. Чепелева 76247 8 Підписне Тираж 26 прим. Міністерство освіти і науки України Державний департамент інтелектуальної власності, вул. Урицького, 45, м. Київ, МСП, 03680, Україна ДП “Український інститут промислової власності”, вул. Глазунова, 1, м. Київ – 42, 01601