Посівний зерновий міцелій базидіальних грибів, спосіб його одержання, композиція, що використовується у способі, та способи вирощування базидіальних грибів

1. Спосіб одержання посівного зернового міцелію базидіальних грибів, який включає відбір зерна для інокуляції культурою базидіального гриба, насичення його вологою, стерилізацію, внесення культури гриба та подальшу інкубацію до повного проростання зерна культурою, який відрізняється тим, що відбирають зерно злакових або технічних культур, або різнотрав'я діаметром до 2,5 мм зі стійкою до механічної та термічної обробки оболонкою та здійснюють насичення зерен водним розчином, що містить ефективну кількість біологічно-активних речовин, біосинтезуючих, антибактеріальних та фунгіцидних компонентів, регуляторів росту та значення рН до встановлення вологості зерна близько 67-70 % та значення рН близько 7-7,5, зволожене зерно стерилізують, охолоджують та інокулюють стерильною зерновою маточною базидіальною культурою у співвідношенні не менше 2-3 % на масу інокулянту, після чого інкубують до повного проростання зерна культурою в режимі коливання температури та тиску зі здійсненням аераційно-дифузної продувки, далі на повністю проросле базидіальною культурою зерно послідовно наносять адгезивне покриття та суміш конденсатно-адсорбентних, біосинтезуючих біологічно-активних мінерально-органічних компонентів. 2. Спосіб згідно з п. 1, який відрізняється тим, що використовують зерно сорго. 3. Спосіб згідно з п. 1, який відрізняється тим, що використовують зерно проса. 2 (19) 1 3 74939 4 12. Спосіб згідно з будь-яким з попередніх пунктів, 20. Посівний зерновий міцелій базидіальних грибів який відрізняється тим, що адгезивне покриття згідно з пунктом 19, який відрізняється тим, що наносять у вигляді розчину наступного складу, зерно являє собою зерно нехлібних злаків. мас. %: 21. Посівний зерновий міцелій базидіальних грибів згідно з пунктом 19, який відрізняється тим, що кондитерський агароїд 2-5 картопляний крохмаль 5-7 зерно являє собою зерно проса або сорго. кукурудзяний крохмаль 7-12 22. Посівний зерновий міцелій базидіальних грибів згідно з пунктом 19-21, який відрізняється тим, двовуглекислий натрій 2-5 емістим (стимулятор росту) 1-2 що зерно має діаметр 2,5 мм. вода питна і електроактивована 23. Посівний зерновий міцелій базидіальних грибів згідно з пунктом 19-22, який відрізняється тим, іонами кремнію решта. 13. Спосіб згідно з будь-яким з попередніх пунктів, що його одержано згідно зі способом за будь-яким який відрізняється тим, що адгезивне покриття з пунктів 1-18. наносять на проросле базидіальною культурою 24. Посівний зерновий міцелій базидіальних грибів згідно з пунктом 19-23, який відрізняється тим, зерно розпиленням. 14. Спосіб згідно з будь-яким з попередніх пунктів, що його використовують для вирощування глив який відрізняється тим, що наносять пилову су(Pleurotus octreatus). міш конденсатно-адсорбентних біосинтезуючих, 25. Посівний зерновий міцелій базидіальних грибів згідно з пунктом 19-23, який відрізняється тим, біологічно-активних мінерально-органічних компонентів наступного складу, мас. %: що його використовують для вирощування сіітаке фундазол 0,01-0,04 (Lentinula edodes). крохмаль картопляний 10-15 26. Композиція для насичення дрібних зерен злакрохмаль кукурудзяний 10-15 кових або технічних культур або різнотрав'я при гіпс будівельний CaSО4 50-60 одержанні посівного зернового міцелію базидіальдвовуглекислий натрій 2-4 них грибів, яка являє собою водний розчин біоловмістим (стимулятор росту) 1-2 гічно-активних, біосинтезуючих речовин, антибакдеревне вугілля 3-7. теріальних та фунгіцидних компонентів, 15. Спосіб згідно з будь-яким з попередніх пунктів, регуляторів росту та значення рН наступного який відрізняється тим, що операції нанесення складу, мас. %: адгезивного та мінерально-органічного біологічноперманганат калію (регуактивного шару здійснюють одноразово. лятор рН) 0,1-0,4 16. Спосіб згідно з будь-яким з попередніх пунктів, двовуглекислий натрій 3-15 який відрізняється тим, що операції нанесення фундазол 0,01-0,02 адгезивного та мінерально-органічного біологічноівін термостійкий (стимуляактивного шару здійснюють дворазово. тор росту) 0,1-0,5 17. Спосіб згідно з будь-яким з попередніх пунктів, крохмаль картопляний 2-5 який відрізняється тим, що одержують зерновий крохмаль кукурудзяний 4-10 міцелій глив (Pleurotus octreatus). гідроокис кальцію СаОН2 18. Спосіб згідно з будь-яким з попередніх пунктів (регулятор рН) 0,1-0,5 1-16, який відрізняється тим, що одержують зервода питна, електроактиновий міцелій сіітаке (Lentinula edodes). вована іонами кремнію решта. 19. Посівний зерновий міцелій базидіальних гри27. Спосіб вирощування базидіальних грибів, який бів, який відрізняється тим, що зерно являє совідрізняється тим, що у субстрат вносять посівбою дрібні зерна злакових або технічних культур, ний зерновий міцелій базидіальних грибів згідно з різнотрав'я зі стійкою до механічної та термічної будь-яким з пунктів 19-25. обробки оболонкою діаметром до 2,5 мм, а проро28. Спосіб вирощування базидіальних грибів, який відрізняється тим, що у субстрат вносять посівслі базидіальною культурою зерна мають нанесену на них у вигляді капсули мінерально-органічну ний зерновий міцелій базидіальних грибів, одерконденсатно-поглинаючу оболонку. жаний способом, згідно з будь-яким з пунктів 1-18. Винахід відноситься до сільського господарства та мікробіологічної промисловості та, зокрема, до мікології, і може бути використаний для промислового вирощування продуктів грибівництва. Відомий поживний субстрат та спосіб його одержання, для вирощування міцелію базидіальних грибів, при якому зерно хлібних злаків варять або парять 15хв., далі додають гіпс та крейду, після чого суміш засипають у колби і стерилізують. Після цього здійснюють пророщування субстрату міцелієм. Для вирішення проблеми агрегації (склеювання) зерна при його замочуванні та стерилізації було запропоновано також спосіб одержання засівного зернового міцелію, при якому зерно злаків замочують у воді стерилізують розбухле зерно при умовах, які суттєвою мірою запобігають післяавтоклавній агрегації зерна, після чого здійснюють його інокуляцію культурою гриба та інкубують інокульоване зерно. Запобігання агрегації зерна забезпечується додаванням до або при замочуванні карбонату кальцію (СаСО3) [ЕР 5 74939 6 0107911 А2, 09.05.1984]. ним міцелієм субстрату. Також винахід не захищає Недоліками наведених вище рішень є те, що міцелій після внесення його у зволожений субдля здійснення запропонованих виноходів страт від ураження патогенною мікрофлорою пенеобхідно або бажано використовувати резволоженого ядра зерна. Також недоліком є те, високоякісне зерно, яке іде на харчові та фуражні що для здійснення винаходу необхідно використоцілі, що є економічно недоцільним. Крім того, провувати високоякісне зерно, зокрема, пшениці, яка варене та зволожене зерно хлібних злаків у іде на харчові та фуражні цілі, що є економічно процесі термостатного проростання субстрату не недоцільним. захищене від згубного додаткового впливу на Як і у попередніх рішеннях, виготовлений у таміцелій надлишкового конденсату, що призводить кий спосіб посівний міцелій є незахищеним від до перезволоження ядра крупнозернового міцелію згубного впливу патогенної мікрофлори, наприкта до інгібування росту гіф базидіальної культури лад [Trichoderma, Trichuryc, Mucor, Pactulium denна початковому етапі інкубації, та до подальшого droides], не забезпечує можливості довготривалого зараження патогенною мікрофлорою в процесі зберігання посадкового матеріалу та його стійкості аераційного повітряобміну. Також слід відмітити, до впливу несприятливих зовнішніх факторів, як що надлишкова волога у ядрі крупнозернового фізичних, так і біологічних, без втрати біологічної міцелію прискорює процес гіфного зростання активності (енергії проростання) посадкового (гомогенізації) міцелію при зберіганні, матеріалу. Крім того великою є ймовірність прискорюється поява грибних примордіїв на контамінації посівного матеріалу конкурентною поверхні міцелію, що зрісся, що в свою чергу негамікрофлорою після засіву, у процесі адаптації тивно впливає на енергію проростання посадковоферментативних систем гриба до нового субстраго матеріалу при засіві субстрату. Більше того, ту (лаг-період), так як білок-вмісні компоненти є виготовлений у такий спосіб посівний міцелій є легкодоступними поживними речовинами (джеренезахищеним від згубного конденсатного впливу лом азоту та вуглецю) для конкурентної та патогенної мікрофлори, як на етапі зберігання мікрофлори. посівного зернового міцелію, так і після внесення Для вирощування грибів, зокрема для його у субстрат (після засіву), особливо під час стимуляції росту засівних культур, використовулаг-періоду. ються не тільки білок-вмісні добавки, а також З рівня техніки також відомим є поживний субспецифічні стимулятори росту. Так, наприклад, страт для вирощування міцелію печериць, який описано використання імунофітоциту - етилового містить зерно хлібних злаків, гіпс, крейду, керамефіру арахідонової кислоти, для скорочення зит та воду і спосіб його приготування. Вказаний строків культивування та підвищення адаптаційних субстрат готують наступним чином: зерно насичувластивостей культури гливи звичайної [RU ють водою, розварюють, в розвар додають керам2183056 С2, 10.06.2002] . Однак використання зит (для зниження витрат зерна), суміш кип'ятять, специфічних стимуляторів росту лише частково та далі охолоджують, перемішують з гіпсом та крейнезначною мірою вирішує наведені вище пробледою (ці добавки регулюють значення рН середоми, що виникають у процесі одержання, зберігання вища та виконують роль буфера, що попереджує та використання засівного міцелію культур склеювання зерна) і стерилізують [А.с. СРСР базидіальних грибів. 835365, бюл. № 21, 07.06.1981]. Використання Задача, на вирішення якої направлено даний крейди та гіпсу для підвищення адгезивних влавинахід є усунути недоліки, присутні у відомих стивостей інокулянту описано також в [Л.В. Гаритехнічних рішеннях, шляхом удосконалення спобова. Грибы в своем саду,- М.: Институт технолособу одержання посівного зернового міцелію гических исследований, 1993, с. 89]. Недоліками базидіальних грибів, та композиції для насичення вказаного рішення є те, зокрема, що для зерна при здійсненні способу, забезпечити удоздійснення виноходу також необхідно використосконалений посівний зерновий міцелій вувати високоякісне зерно, зокрема пшениці, яке базидіальних грибів та способи вирощування іде на харчові та фуражні цілі, що є економічно грибів. недоцільним. Більше того, так само, як і в описаЗаявлені технічні рішення відрізняються від ному вище рішенні, виготовлений у такий спосіб відомих аналогів, що виробляють міцелій на зерні посівний міцелій є незахищеним від конденсатного хлібних злаків як у технології насичення зерна вовпливу та патогенної мікрофлори, як на етапі логою перед автоклавуванням, так і в заключній зберігання посівного зернового міцелію, так і після інкубаційній стадії дозрівання. внесення його у субстрат (після засіву). Поставлена задача досягається тим, що Відомим також є спосіб стимулювання росту використовується дрібне зерно злакових культур з та захисту від агрегації міцелію їстівних грибів на твердою оболонкою, що надійно зберігає цілісність поживному середовищі, що містить зерно хлібних у процесі автоклавування. Дослідами встановлені злаків крейду та гіпс, який відрізняється тим, що необхідні параметри придатності зерна для заявупоживне середовище вносять стимулятор росту, леного рішення, а саме: зерно до 2,5мм, з міцною розчин селенату натрію [Дараков О., К.:, Наукова до механічної та термічної обробки поверхнею думка, 1978, с. 24 SU1512520, 07.10.89]. зернової оболонки. Найбільш придатними для Недоліками вказаного рішення є те, зокрема, здійснення винаходу виявились дрібні зерна як що даний винахід не забезпечує захисту міцелію хлібних злаків, так і насіння технічних культур з від згубного впливу субстратного конденсату на твердою зовнішньою оболонкою, стійкою до перезволоження ядра зерна заявленого злакового термоударів у процесі автоклавування. Зокрема міцелію у процесі інкубування інокульованого данасіння сорго, проса, льону, рапсу насіння 7 74939 8 різнотрав'я та інших культур у діаметрі до 2,5 мм є метаболізму базидіоміцетів, які мають інгібуючий придатним для використання у заявленому вплив на проростаючий інокулят та розвиток винаході. гіфних утворень дендроїдного типу. Також класичний метод термічного зволоженЗавдяки дифузно-аераційній продувці ня зерна попереднім проварюванням, який руйнує дрібнозернового інокулянта, відсутнє утворення зовнішню оболонку зерна було замінено довготриперезволожених та вуглекислих "кишень" у валим насиченням ядра дрібних зерен або насіння дозріваючому дрібнозерновому міцелії. Перепад вологою та мікроелементами, антибактеріальними температур та внутрішньобоксового тиску сприята фунгіцидними речовинами, інгредієнтами ють дифузно-конденсатному обсушуванню та кисбіосинтезу, стимуляторами росту та регулювання невому насиченню проростаючого рН зерна. дрібнозернового посівного міцелію та прискореноВ якості вказаних вище та дозволених до заму розвитку гіфних утворень базидіальної культустосування підходящих інгредієнтів, що можна ри. використовувати для насичення ядра дрібних зеНанесення на поверхню зерна адгезивної та рен та насіння є, зокрема такі, як: фумар, фундаконденсатно-поглинаючої мінерально-органічної зол, перманганат (регулятор рН), гетеролуксин, захисної оболонки забезпечує тринатрійфосфат, Беноміл, Івін, Дивостім, внутрішньозерновий антибактеріальний захист в Бетастимулін, Агростимулін, двовуглекислий дрібнозерновому міцелії, не допускається конденнатрій, гідроокис кальцію СаОН2 (регулятор рН) та сатне перезволоження ядра зерна та контамінація інші. Найбільш придатною та ефективною клейковинної серцевини зерна конкурентною антибактеріальною та біосинтезуючою і мікрофлорою. Шляхом створення капсульної конбіостимулюючою сумішшю для попереднього наденсатно-адсорбентної оболонки створюється сичення ядра зерна та насіння, якбуло встановлерезервуар біосинтезованих ініціюючих інгредієнтів но дослідним шляхом є розчин, що має наступний у вигляді біостимулюючого містка активного пересклад інгредієнтів (табл.1) , мас.%: ходу біоактивізованої базидіальної культури у лігнін-целлюлозовмісний субстрат. Таблиця №1 Далі буде проілюстровано здійснення винаходу на окремих прикладах, які розкривають оптимальні варіанти його здійснення, однак ні в Перманганат калію 0,1-0,4% якому разі не обмежують його. (регулятор рН) Приклад 1. Добір зерна Двовуглекислий 3-5% ГОСТ 2156-76 Дослідами встановлені необхідні параметри натрій придатності зерна для заявленого рішення, а саТУ 2387-026Фундазол 0,01-0,02% ме: зерно до 2,5мм, з міцною до механічної та 11365182-97 термічної обробки поверхнею зернової оболонки. ТУ Україна 24,2Івін термостійкий Найбільш придатними для здійснення винаходу 0,1-0,5% 03-563790(стимулятор росту) виявились дрібні зерна як хлібних злаків, так і 0112002 насіння технічних культур з твердою зовнішньою Крохмаль картоп2-5% ГОСТ 7699-78 оболонкою, стійкою до термоударів у процесі авляний токлавування. Зокрема насіння сорго, проса, льоКрохмаль кукуруд4-10% ГОСТ 7697-82 ну, рапсу, різнотрав'я та інших культур у діаметрі зяний до 2,5 мм є придатним для використання у заявГідроокис кальцію ДСТУ-БВ2.7.90леному винаході. Дослідами встановлено СаОН2 (регулятор 0,1-0,5% 99 найбільш прийнятні культури. Ними виявилися рН) насіння сорго (ГОСТ 8759-92) та просо Вода питна елекДозволено до (ГОСТ22983-88). Вказані культури показали троактивована використання найбільшу стійкість при автоклавній термообробці, іонами кремнію решта МОЗ України причому вони характеризувалися найбільшою та (вміст Si рівний №5.10/5117 від найвищою розчин-поглинаючою структурою ядра 10,0мл/л) 12.02.2002. зерна з вище перерахованих, підвищеною аераційною дифузністю, найвищим вмістом Також запропоновано спеціальний режим кремнію в оболонці зерна що є оптимальною для інкубування зерна, інокульованого стерильною прискореного проростання базидіальних штамів. зерновою маточною базидіальною культурою, до Приклад 2. Підбір оптимального складу розчиповного проростання зерна культурою, який ну для передавтоклавного насичення зерна забезпечує досягнення стерильного Досліди проводились у порівнянні з контрольвнутрішньобаночного аераційного газообміну та ним крупнозерновим інокулянтом (пшениця) а таколивання температури в дрібнозерновому прокож з дрібнозерновим інокулянтом (просо). Зволоростаючому інокулянті. Зі зміною коливання темження зерна здійснювалось методом ператури та перепаду тиску в ламінарному термопроварювання згідно з класичною технологічною статному боксі відбувалася внутрішньобаночна розробкою, затвердженою Інститутом ботаніки стерильна аераційно-дифузна продувка, що України, а також застосовувався ряд біостимулювключає в себе внутрішньобаночне обсушування ючих, антибактеріальних, протигрибкових та біозерна від сконденсованої вологи у період стартосинтезуючих складів розчину у якості зволожувача вого інкубування, а також вивільнення проростаюдрібнозернового інокулянту (просо), а саме чого інокулянту від вуглекислого газу та продуктів (мас.%): 9 74939 10 порівняльного аналізу з використанням контрольних інокулянтів, необроблених розчином. ВикориСклад №1 стовувалося відкаліброване зерно злакових культур (див приклад 1). Досліди велися методом порівняння впливу різних концентрацій інгредієнтів Оцтова кислота 2% розчину на швидкість росту базидіальної культури Охмілене пивне сусло 10% в інкубованому інокулянті. При виготовленні розДивостим 0,3% чину, антибактеріальні та біосинтезуючі компоненВода питна ГОСТ 2874 82 решта ти розчиняли у холодній воді (20 - 28 С) до отримання розчину без осаду. Використовувалися Склад №2 інгредієнти, що є дозволеними для використання ДЕРЖ КОМ САНЕПІДЕМ НАГЛЯДОМ. Перманганат калію 0,03% Ефективність впливу концентрацій розчину Карбонат кальцію 4% оцінювали за швидкістю обростання гіфами Відходи соєвої муки 5% базидіальної культури досліджуваних інокулянтів. Картопляний крохмаль 6% Візуальним способом було встановлено, що зниФундазол 0,1% ження концентрацій антибактеріальних та Вода, активована іонами кремнію біостимулюючих інгредієнтів розчину №1 не впли(дозволено до використання МОЗ решта вало на швидкість гіф них утворень, ріст гіфів не України № 55117 від 12 02 2002) відрізнявся від контрольної партії, де не застосовувалась внутрішньозернова обробка розчином. Склад №3 Завищений процентний склад інгредієнтів у розчині №1, як показали досліди, інгібував ріст Гідроокис кальцію (СаОН2) 3% гіфних утворень на початковій стадії Агростимулін 0,3% термоінкубації та призупиняв ріст гіфів на 5-7 доФумар 0,1% бу. Експериментальне встановлено оптимально Відходи шкіряної промисловості збалансований процентний діапазон канига (вміст підшлунків забійних 5% антибактеріальних та рістрегулюючих інгредієнтів, тварин) що надають максимальну стартову активність базидіоміцетній культурі у дрібнозерновому Вода питна (ГОСТ2874-82) решта інокулянті. Встановлений оптимальний процентний діапазон концентрацій інгредієнтів показаний у Склад №4 таблиці 1 (розчин 1). Оброблений вказаним розчином дрібнозерновий інокулянт у порівнянні з конКальцинована сода 7% трольними партіями значно швидше проростав Деревне вугілля (ТУ 24 1 00274105 2% гіфами базидіальної культури. Випередження у 010-2001) порівнянні з контролем складало 2-Змм за добу. Бетастимулін 0,3% Повне гіфне обростання дрібнозернових Бенаміл 0,1% інокулянтів, інокульованих штамами базидіальних Крохмаль кукурудзяний 5% грибів та оброблених розчином №1 відбувалося на Вода питна (ГОСТ2874-82) решта 7-9добу. На контрольних зразках, інокульованих тими ж самими штамами, але не оброблених розСклад № 5 чином, повне обростання відбувалося на 12-14 добу. 5мл на 1кг Приклад 3 обробка (насичення) зерна перед Селенат натрію (Na2SeО4) в зерна (проконцентрації 104-106 г/л автоклавуванням са) Обробку зерна розчином здійснювали у Івін 0,1% наступній послідовності: Зерно злакових культур Крохмаль картопляний 3% діаметром 2-2,5мм закладали у ємність та зволоCaSО4 5% жували розчином (див табл. 1) на протязі 36 годин Вода, активована іонами кремнію при температурі розчину близько 18-20°С для до(дозволено до використання МОЗ решта сягнення оптимальної вологості зерна 67-70% із України №55117 від 12022002) застосуванням барботування зерна у розчинах стислим повітрям, після чого зволожене зерно Вказані склади розчинів є придатними для пецентрифугували звільнюючи від поверхневого редавтоклавного насичення зерна, однак надлишку вологи. Відмічалося, що у завершальній дослідним шляхом було встановлено, що оптистадії насичення зерна розчином відбувалися мальним є склад розчину, представленого у якісні зміни поверхневої оболонки. Зерно набуватаблиці № 1. ло виражений золотистий колір, відмічалася Для одержання дослідним шляхом оптимальприсутність хлібного запаху. Насичене розчином но збалансованого складу (див табл. 1) біохімічних зерно зберігало цілісність оболонки. Збільшувався компонентів, що сприяють біосинтезу з об'єм зерна на 0,2-0,3мм, значення рН зерна стаантибактеріальною, фунгіцидною та новило 7-7,5. підготовлене та оптимально зволобіостимулюючими функціями, використовувався жене зерно розфасовували у банки, які закривали розширений діапазон концентрацій інгредієнтів кришками, оснащеними бактерицидним тампоном, розчину табл.№1. Досліди проводилися методом або закатували м'якою фольгою. 11 74939 12 Приклад 4 автоклавування внутрішньобоксового тиску сприяли дифузноБанки з зерном стерилізували автоклавуванконденсатному обсушуванню та кисневому насиням при температурі 118-121°С та тиску 1,8-2 атченню проростаючого дрібнозернового посівного мосфери на протязі 70 хвилин. міцелію та прискореному розвитку гіфних утворень Приклад 5 Інокуляція культурою гриба базидіальної культури. Охолоджений до 25-30°С інокулянт вносили в Приклад 7 нанесення адгезивного шару ламінарну установку, попередньо оброблену На поверхню зерна, після того, як воно ультрафіолетом (бактерицидна лампа) на протязі повністю проросло базидіальною культурою (див 20 хвилин. Після 30 хвилин відстою ламінару, приклад 6), наносили адгезивне покриття, яке поінокулянт інокулювали стерильною зерновою макривало зерно плівкою у вигляді капсули для точною базидіальною культурою, наприклад маподальшої "інкрустації" клейкої поверхні утвореної точною культурою гливи звичайної (штам 451, 453, капсули пористим конденсатно-адсорбентними та 716) у співвідношенні 3-5% на масу інокулянту. біо стимулюючими мінерально-органічними комІнокуляції контрольних та дослідних партій понентами. Для нанесення плівкоутворюючої капздійснювали одночасно в одному ламінарному сули на зерно, застосовували як питну воду (ГОСТ потоці однаковими штамами, з однаковим процен2874-82), так і різноманітні органічні сполуки, що том внесення інокулята на масу інокулянта з викохарактеризуються адгезивними властивостями, у ристанням однакової технології стерильного концентрації, що дозволяє дисперсну пересіву. пульверизацію плівкоутворюючого середовища. Приклад 6 інкубування До таких речовин, зокрема, відносяться: 2% Інокульовані банки перетрушували, досягаючи агароїдний розчин, 2% карбоксиметилцелюлозний рівномірного розміщювання зернового маточного розчин, 1,5% пептиновий розчин, 0,03% інокуляту по всьому інокулянту. Потім на 3 доби поліакриламідний розчин, крохмаль фодекс (розрозташовували для стартового проростання в робка ІБОН УРСР) та інші. Вище вказані зв'язуючі "розгінному" ламінарному боксі з відносною інгредієнти можуть бути використані при здійсненні вологістю 60-65%) та температурою 28-29°С, винаходу, однак вони не мають надійної освітленість (контрольна). В зв'язку зі щільністю зкріплюючої основи. Нанесена адсорбентна обоприлягання дрібнозернового інокулянта в банках лонка при механічному обволіканні частково руйта інтенсивним заростанням базидіальною культунувалась і для усунення хиб мінеральнорою верхньої частини інокулянта в період стартоадсорбентної оболонки була потреба у повторнового інкубування, на 5-6 день у нижній частині баму дисперсному зволоженні зруйнованої оболонки нок з'являються властиві дрібнозерновому і додатковому обволіканні адсорбентом. Найбільш інокулянту конденсатні та вуглекислі "кишені", що технологічно в'яжучим, клейким локалізують повне заростання зерна базидіальною плівкоутворювачем, придатним для використання культурою. Для вирішення даної проблеми, у винаході, як було встановлено дослідним шлядрібнозерновий проростаючий інокулянт перенохом, є плівкоутворюючий розчин наступного скласять у інкубаційний ламінарний бокс з субстратним ду мас.%: навантаженням 120кг на 1 м2 з відносною вологістю 70-75% та вмістом СО2 - 18-22%, азоту Таблиця 2 3% з двократною обертуваністю повітря та температурою 25-26°С. Піддослідний проростаючий Кондитерський 2 - 5% ТУ-15-04-454-79 інокулянт витримували 96 годин в режимі колиагароїд вання атмосферного тиску в межах 45-50 Па (або Картопляний 5 - 7% ГОСТ 7699-78 5кг/см3) і більше та температури 5-7°С (період кокрохмаль ливання 1 раз на добу по 360 хвилин). Таким чиКукурудзяний 7 - 12% ГОСТ 7797-82 ном досягали стерильного внутрішньобаночного крохмаль аераційного газообміну та коливання температури Харчовий жела2 - 4% ГОСТ 11293-89 в дрібнозерновому проростаючому інокулянті. Зі тин зміною температури та перепаду тиску в Двовуглекислий 2 - 5% ГОСТ 2156-76 ламінарному термостатному боксі відбувалася натрій внутрішньобаночна стерильнааераційно-дифузна Вмістим (сти1 - 2% ТУ-У 88.264.021-95 продувка, що включає в себе внутрішньобаночне мулятор росту) обсушування зерна від сконденсованої вологи у Вода питна період стартового інкубування, а також електроактивоДозволено до виковивільнення проростаючого інокулянту від вуглевана іонами ристання МОЗ решта кислого газу та продуктів метаболізму кремнію (вміст України №5.10/5117 базидіоміцетів, які мають інгібуючий вплив на проSi рівний від 12.02.2002. ростаючий інокулят та розвиток гіфних утворень 10,0мл/л) дендроїдного типу. На відміну від контрольного інокулянту (проПлівкоутворюючий розчин бажано наносити на со), що вирощувався без ламінарної дифузнопроросле культурою зерно у ламінарних умовах аераційної продувки, завдяки дифузно-аераційній при умовах, що забезпечують стерильність. На продувці дрібнозернового інокулянта, відсутнє поверхню пророслого базидіальною культурою утворення перезволожених та вуглекислих "кинасіння аерозольним способом наносився розчин, шень" у дозріваючому дрібнозерновому міцелії, що який покривав зерно плівкою у вигляді липкої капмало місце у контролі. Перепад температур та сули. 13 74939 14 Приклад 8 нанесення пористого конденсатноному приміщенні в однакові за розміром адсорбентного та біостимулюючого мінеральнопакувальні поліетиленові пакети з внесенням органічного покриття інокулянту 1,5-3% на масу вологого субстрату 15Після нанесення на поверхню зерна адгезив16 кг. Дотримувалися єдиної технології пошарової ного покриття, яке покривало зерно плівкою у інокуляції з використанням однакових штамів. вигляді липкої капсули (див приклад 7), зерно Інкубували інокульовані субстрати в одному терперемішували з баластною сумішшю конденсатномостатному боксі з вологістю 65-70% з біологічним адсорбентних мінерально-органічних речовин і у субстратним навантаженням 160 кг/м2, вміст СО2 обертаючомуся дражераторі сухі компоненти 18-20%, азоту 3%, освітленість контрольна, з двообволікали поверхню клейкої капсули, поступово кратною обертуваністю біологічно фільтрованого ущільнюючись у гомогенний пористий адсорбентповітря в боксі 40-50м3/т. Перші 72 години витриний кокон з товщиною оболонки близько 1мм. У мували інокульовані субстратні блоки при якості сухого адсорбентного антибактеріального температурі 26-28°С, потім знижували температумінерально-органічного пористого баласту з комру в термостатному боксі, витримували оптимальпонентами ініціації ростових процесів найбільш ну температуру в субстратах 25-27°С. Після 288 придатною для використання у заявленому годин здійснювали інспекцію досліджуваних винаході виявилася мінерально-органічна суміш , субстратів, інокульованих штамами 451, 453, 716. що складається з сухих подрібнених біоорганічних В перших партіях з 1,5%-им внесенням міцелію на та мінеральних інгредієнтів наступного складу, масу вологого субстрату встановлено: контрольні мас.%: блоки інокульовані стандартним крупнозерновим пшеничним міцелієм штам 451, 453, 716 були Таблиця 3 заражені бактеріальними інфекціями та пліснявими грибками [Mucor, Trichoderma, Dactulium dendroides] частково 30%. 60% по всій нижній ТУ 2387-026Фундазол 0,01-0,04% окружності субстрату. 10% субстратних блоків на 11365182-97 15 добу не досягли повної стадії дозрівання (проКрохмаль 10-15% ГОСТ 7699-78 ростання). Досліджувані блоки, інокульовані 1,5%картопляний им дрібнозерновим міцелієм «Перемога», згідно з Крохмаль 10-15% ГОСТ 7697-82 винаходом (штам 451, 453, 716), в середньому кукурудзяний були заражені на 5-10%, при цьому, 90% субГіпс стратних блоків досягли повного проростання як в будівельний 50-60% ДСТУ Б.В. 2.782-99 середині, так і по всій площині, покрилися гіфами CaS04 базидіальних культур з утворенням чайнодраглиДвовугле2-4% ГОСТ 7697-82 стого нальоту та були готові для переносу в вегекислий натрій тативне приміщення. Візуально досліджували субВмістим (стистрати, інокульовані 3%-им міцелієм на масу мулятор рос1-2% ТУ-У 88.264.021-95 вологого субстрату. Дослідження проводили на 15 ту) й 22 добу. Контрольні блоки вагою 15-16 кг Деревне ТУ 24.1.00274105.0103-7% інокульовані крупнозерновим пшеничним міцелієм вугілля 2001 штамів 451, 453, 716 були бактеріальне заражені на 15-20% (штам 453), 9-12% (штам 451), 18-20% Операцію нанесення як адгезивного, так і (штам 716). На нижніх частинах відмічалося перемінерально-органічного біологічно активного шару зволоження та закисання субстрату, а також значможна здійснювати як одноразово, так і дворазона конденсатна зволоженість поверхневої частини ве. блоків (мішків). Близько 80% субстратів, крупноПриклад 9. Біологічна активність зерновим міцелієм штамів не досягли стадії повнодрібнозернового міцелію го дозрівання. Дослідження на предмет біологічної активності Дослідили субстратні блоки (вага 15-16 кг), дрібнозернового міцелію «Перемога» у капсульноінокульовані дрібнозерновим міцелієм «Перемога» адсорбентній мінерально-органічній оболонці, в капсульній конденсатно-адсорбентній згідно зі способом, у порівнянні з аналогами промінерально-органічній оболонці (штам 451, 453, водили на лігнін-целюлозовмісному субстраті, що 716). Досліди показали наступні результати: пройшов класичну термічну, ферментативну оббактеріальне зараження на субстратних блоках робку. У якості сировини використовувалась лузга склало 2% (штам 451), 3-5% (штам 453), 5-7% соняшника у суміші з подрібненою соломою (штам 716). Майже 90% блоків повністю покрилися пшениці у співвідношенні 1:1. Вологість білим з буродраглистими вкрапленнями та досягкомбінованого субстрату 65-70%, вміст азоту 1,5%, ли ступеня повної зрілості. Дослідили контрольні рН 5,5 6,5. інокуляцію здійснювали та дослідні блоки на 22 добу. Встановлено, що 68досліджуваним дрібнозерновим міцелієм «Пере70% контрольних субстратів досягли повного стумога». Контрольний міцелій (стандартний крупнопеня зрілості, однак мають незначне бактеріальне зерновий інокулянт, виготовлений по технології зараження. 30-35% утилізовано з урахуванням тих, Інституту ботаніки НАНУ). Інокуляцію субстрату що були заражені пліснявими грибками [Mucor, здійснювали в стерильному потоці повітря Trichoderma, Trichuryc, Dactulium dendroides]. Субдрібнозерновим міцелієм «Перемога» (зерно прострати, що було інокульовано дрібнозерновим са) та контрольним крупнозерновим міцелієм з міцелієм «Перемога» (штам 451, 453, 716) на 22 хлібного злаку (озимої пшениці) одночасно в оддобу спостерігалося утворення грибних примордіїв 15 74939 16 в перфорованих отворах плівкової субстратної бродіння в ядрі зерна. Тим самим створюється упаковки. Спостерігалася бактеріальна стійкість біологічна чистота в інокуляті і фітосанітарні умови міцелію в субстраті, навіть при бактеріальній росту для базидіальної культури в рослинному зараженості інкубаційного боксу. Відмічалося субстраті. Запропонований дрібнозерновий значно коротші терміни дозрівання інокульованих міцелій з нанесеною капсульною конденсатносубстратів біологічно-активним дрібнозерновим адсорбентною оболонкою, насиченою збалансоміцелієм в капсульній конденсатно-адсорбентній ваними термостійкими біохімічними компонентами мінерально-органічній оболонці. ініціації ростових процесів у поєднанні з розчинеДосліджували також врожайність біомаси ними інгредієнтами стимуляції росту та сухими грибів на масу субстрату. Встановлено, що рослинними стимуляторами росту, внесеним в врожайність грибів контрольних субстратних оболонку дрібнозернового міцелію інтенсифікують блоків, інокульованих звичайним крупнозерновим лаг-період контамінації бізидіального інокуляту з пшеничним міцелієм у кількості 1,5-3% на масу лігнін-целюлозою. Внесені в серцевину як зерна, субстрату склала 25-30% з трьох ротацій плодотак і в капсульну плівку та в антибактеріальну адношення. Врожайність грибів з субстрату сорбентну захисну оболонку компоненти інокульованого дрібнозерновим міцелієм «Перебіосинтезу та інтенсифікації стимулюють мога» (при тій самій кількості внесення міцелію на швидкість зустрічного поєднання гіф дендроїдного масу субстрату) склала 35-40%. З трьох ротацій типу як в міцелії при термостатній обробці так і в плодоношення завдяки ініціації рістрегулюючих субстраті, що інкубується, стимулюючи запуск процесів та біо синтезуючих інгредієнтів, що стартових реакцій процесу проростання. Тим саприсутні в дрібнозерновому міцелії «Перемога». мим інтенсивно інгібується, а потім локалізується Скорочено цикл ротаційних вегетацій у порівнянні вогнище розвитку патогенних мікроорганізмів, що з контрольними субстратами на 96-120 годин, тим виникають на початковій стадії самою ініційованою самим збільшено вегетаційну обіговість виросних бактеріально-захищеною базидіальною культурою приміщень. Вказані дослідження чітко показали в капсульній конденсатно-адсорбентній оболонці. переваги запропонованого дрібнозернового Збалансований антибактеріальний, міцелію «Перемога» в капсульній конденсатнобіосинтезуючий та біо стимулюючий розчин (див. адсорбентній мінерально-органічній оболонці пенапр. Розчин №1) для насичення зерна у ред аналогами. Запропонований міцелій значно поєднанні з лужними компонентами сприяють переважає крупнозерновий інокулят хлібних злаків гідролізуючій деструкції поверхневого воскового як за біологічною активністю та антиконденсатною шару зерна. Інтенсифікують делігнінофікацію і антибактеріальною стійкістю та забезпечує вихітинових оболонок на клітинному рівні та сприяробничу економічність процесу вирощування ють вивільненню та трансформації продуктів фербазидіальних грибів. ментативного розщеплення з серцевини ядра зерНанесена на пророщене зерно клейка капсула на через агароїдну капсулу, що утворює плівку в у вигляді плівки вкрита пористою адсорбентномінерально-органічну адсорбентну захисну обогомогенізуючою мінерально-органічною захисною лонку, а потім в субстрат. Завдяки лужнооболонкою захищає розвиток гіф базидіальної гідролізній деструкції воскової оболонки культури від конденсатного інгібування, що змінюються деревинні властивості воскової обовиникає у процесі геміцелюлозної деструкції сублонки зерна та субстрату, де перебуває міцелій страту базидіоміцетами, що супроводжується „Перемога", що в свою чергу сприяє активізації інтенсивним тепловиділенням та утворенням рістрегулюючих процесів базидіальної культури як надлишкової вологи, як в субстраті так і на дрібнозерновому інокулянті, так і в субстраті. внутрішній поверхні субстратної упаковки. Ядро зерна, плівкова капсула, нанесена конДослідами підтверджено, що конденсатне переденсатно-адсорбентна мінерально-органічна обозволоження серцевини зерна хлібних злаків є ослонка є біосинтезованим резервуаром продуктів новною причиною зараження патогенними грибкаферментативного розщеплення, полісахаридів, ми типу Mucor, Trichoderma, Trichuryc, Dactulium органічного азоту, що забезпечують стартову dendroides, як залишкового зерна, що є у злаковій біологічну активність дрібнозерновому інокуляту сировині, так і внесеного в субстрат у вигляді так іінокулянту у період інкубаційної деструкції посівного інокуляту крупнозернового міцелію. культурою гриба лігніно-целюлозного субстрату. Надлишковий конденсат адсорбується в ядро Створена обволікаюча капсульна конденсатзерна хлібних злаків. Зерна набухають, зернова но-адсорбентна мінерально-органічна антигрибкооболонка розривається і клейковина ва та антибактеріальна захисна оболонка у контамінується в умовах не стерильного субстрапоєднанні з внесеними сухими інгредієнтами ту. Тим самим створюється поживне середовище стимуляції рістрегулюючих процесів та ініціації для множинних вогнищ інфекції, викликаної конкугіфних утворень поглинають надлишкову конденрентною мікрофлорою, яка присутня або проникає сатну вологу і розчиняючись в конденсаті набував субстрат в процесі інкубаційного аераційного ють властивостей біосинтезуючого газообміну субстрату. Створена капсульна плівка трансформаційного поживного середовища на зерна та конденсатно-адсорбентна мінеральноінтенсифікації гіфного переходу базидіальної кульорганічна захисна оболонка нанесена на поверхню тури із зерна міцелію в плівкову капсулу, далі, в капсули блокує негативний процес насичення серпоживну конденсатно-адсорбентну мінеральноцевини зерна вологою. Мінерально-органічна обоорганічну захисну оболонку, а потім, в лонка максимально адсорбує в себе конденсат, целюлозовмісний субстрат. Закладена біологічна локалізує перезволоження та бактеріальне активність та адаптаційність посівного 17 74939 18 дрібнозернового міцелію до субстрату через 8) Завдяки присутності біосинтезуючих біосинтезований "місток" поживного середовища інгредієнтів в адсорбентній оболонці міцелію "Пенанесеного на плівкову капсулу і адсорбентну ремога", що спричиняють деструкцію воскової оболонку має винахідницький рівень та суттєве плівки як зерна, так і злакових субстратів, значно технологічне та економічне значення в процесі поліпшилось засвоювання біомасою базидіальних виробництва лігніно-целюлозовмісних грибів розщеплених поживних речовин. Тим самим бактеріальне захищених субстратів з мінімальним збільшено вихід біомаси гриба на 14-18% у інкубаційним періодом гіфного проростання, а тапорівнянні з аналогами. кож у виробництві адаптованого до інокулянту 9) Завдяки присутності збалансованої групи стійкого до патогенної мікрофлори та біологічно стимуляторів росту як в ядрі зерна так і в активного дрібнозернового міцелію в капсульній нанесеній оболонці, активізовано ріст гіфних утвоадсорбентній мінерально-органічній оболонці. рень базидіальної культури на початковій стадії Техніко-економічна ефективність інкубування субстрату, і тим самим значно скородрібнозернового міцелію "Перемога" в капсульній чено час дозрівання субстрату. конденсатно-адсорбентній мінерально-органічній 10) Дрібнозерновий міцелій в капсульній конантибактеріальній та протигрибковій захисній денсатно-адсорбентній мінерально-органічній захисній оболонці: захисній оболонці стійкий до механічного травму1) завдяки багатоточковості інокуляції субвання гіфних утворень і може бути використаний в страту дрібнозерновим міцелієм на 35-40% зменавтоматизованих лініях по виробництву субстрату шено необхідну кількість внесення посівного для вирощування грибів. інокуляту в захисній оболонці на масу субстрату. При вивченні відомих аналогів в галузі вироб2) Завдяки відрегульованості рН в ництва міцелію з зерна хлібних злаків та аналогічдрібнозерновому інокулянті інгредієнтами насиних рішень, не було виявлено застосування підхочуючого розчину (розчин №1) додатково ду в якому використовується нанесення на ініційовано ріст базидіальної культури в період проросле базидіальною культурою зерно клейкої термостатного дозрівання міцелію. капсули та пористої конденсатно-адсорбентної 3) Процент зараження субстрату патогенною мінерально-органічної захисної оболонки. Техномікрофлорою зведено до мінімуму, зокрема, завлогічний метод передавтоклавного зволоження дяки відсутності контамінуючих вогнищ зернового зерна біологічно-активними хімічними елементами слизу в субстраті. суттєво відрізняється від відомих аналогів. Заяв4) Відпадає необхідність у використанні доролений винахід, який передбачає обволікання дрібгого та енергоспоживаючого обладнання для пронозернових зерен пророслих базидіальною кульварювання зерна. турою клейкою конденсатно-адсорбентною 5) Знижено собівартість виробництва міцелію, мінерально-органічною захисною оболонкою назокрема, завдяки використанню нехлібних злаків повненою сухими інгредієнтами ферментативного та насіння технічних культур. розщеплення та ініціації ростових процесів має 6) З'явилася можливість довготривалого винахідницький рівень і може бути використане в зберігання дрібнозернового міцелію «Перемога» в промисловості, дозволяє на практиці здійснити капсульній конденсатно-адсорбентній мінеральнозаявлений винахід, а також забезпечує практичне органічній захисній оболонці без суттєвого знизастосування всіх його переваг у виробництві дріження енергії проростання та суттєвого зниження бнозернового стійкого до патогенної мікрофлори зараження патогенною мікрофлорою. посівного міцелію в капсулі й конденсатно7) При скороченні проценту внесення запроадсорбентній мінерально-органічній захисній обопонованого дрібнозернового міцелію «Перемога» лонці, так і в виробництві швидкоінкубовного лігніна масу субстрату на третину скорочено но-целюлозного субстрату для вирощування кульінкубаційний цикл пророщування субстрату та тивованих базидіальних грибів, таких як, збільшено на 15% порівняно з аналогами вихід наприклад, глива звичайна, печериця двоспорова, біомаси грибів. кільцевик, опеньок літній, сіітаке та інші. Комп’ютерна верстка М. Клюкін Підписне Тираж 26 прим. Міністерство освіти і науки України Державний департамент інтелектуальної власності, вул. Урицького, 45, м. Київ, МСП, 03680, Україна ДП “Український інститут промислової власності”, вул. Глазунова, 1, м. Київ – 42, 01601