Спосіб отримання рекомбінантних штамів дріжджів saccharomyces cerevisiae з підвищеною активністю лужної фосфатази

Реферат: Спосіб отримання рекомбінантних штамів дріжджів Sacchromyces cerevisiae з підвищеною активністю лужної фосфатази включає введення в геном дріжджів S. cerevisiae вектора для мультикопійної інтеграції, який містить експресійну касету, що складається з промотору гена алкогольдегідрогенази (ADН1), відкритої рамки зчитування гена лужної фосфатази (РНО8) та термінатора ієна цитохрому С (CYC1), та модифікованого гена kаnМХ4 (виконує роль селективного маркера), які фланковані δ-послідовностями. UA 79020 U (54) СПОСІБ ОТРИМАННЯ РЕКОМБІНАНТНИХ ШТАМІВ ДРІЖДЖІВ SACCHAROMYCES CEREVISIAE З ПІДВИЩЕНОЮ АКТИВНІСТЮ ЛУЖНОЇ ФОСФАТАЗИ UA 79020 U UA 79020 U 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 Корисна модель належить до галузі біотехнології і є способом отримання рекомбінантних штамів дріжджів Saccharomyces cerevisiae з підвищеною активністю лужної фосфатази за допомогою мультикопійної інтеграції гена РHО8 в геном цих дріжджів. Лужна фосфатаза це фермент, що здатний здійснювати гідроліз дифосфатного зв'язку у різних речовинах, зокрема в АТФ-сполуці, що необхідна для синтезу компонентів дріжджових клітин. Припускається, що зниження внутрішньоклітинного рівня АТФ у клітинах дріжджів S. cerevisiae призведе до підвищення продуктивності алкогольної ферментації за рахунок того, що менша кількість спожитої глюкози використовуватиметься для накопичення дріжджової біомаси, і більша її кількість перетворюватиметься до кінцевого продукту - етанолу [1]. Відомо, що здійснювалася експресія модифікованих форм гена РНО8 під контролем сильного конститутивного промотору з метою використання отриманих рекомбінантних штамів для дослідження процесів автофагії у клітинах дріжджів, як, наприклад, описано в [2], проте модифікований ген вводився в клітини S. cerevisiae або в складі реплікативних плазмід, які хоч і забезпечують високу копійність гена в клітині, проте легко втрачаються у неселективних умовах, або в складі інтегративних векторів, які є стабільними, проте низькокопійними. Також відомо, що для забезпечення стабільної мультикопійної інтеграції гена в геном дріжджів S. cerevisiae використовуються вектори, що містять δ-послідовності. δ-послідовності це довгі кінцеві повтори нуклеотидів, що входять до складу ретротранспозонів Ту1 і Ту2, що вбудовуються в геномну ДНК дріжджів. Копії цих нуклеотидних послідовностей залишаються у вихідній ділянці молекули ДНК після того, як відбулася транспозиція Ту-елемента в іншу ділянку, тому в геномі дріжджів присутня також велика кількість ізольованих δ-послідовностей. Загалом налічується близько 425 таких послідовностей у геномній ДНК S. cerevisiae [3]. Тому вектор, що містить δ-послідовності, забезпечуватиме інтеграцію фланкованої цими послідовностями ділянки ДНК у δ-локуси в геномній ДНК за рахунок гомологічної рекомбінації. При використанні такого вектора для трансформації можна отримати рекомбінантні штами, що містять від 1 до 8-10 копій вектора, інтегрованого у геномну ДНК. Для того, щоб отримувати лише штами з мультикопійною інтеграцією вектора, можна використовувати модифіковані селективні маркери, що здатні підтримувати ріст клітин дріжджів у селективних умовах лише в тому випадку, якщо вони присутні в геномі в кількох копіях. Найбільш близьким до запропонованого є спосіб отримання рекомбінантних штамів S. cerevisiae з високою копійністю досліджуваного гена за рахунок використання вектора, що містить нуклеотидні послідовності, гомологічні послідовностям рРНК-локусів S. cerevisiae і модифікований селективний маркер ген leu2-d, що має вкорочену промоторну ділянку (близько 50 нуклеотидів) і, за рахунок цього, знижений рівень експресії [4]. Однак, використання гена leu2-d, як селективного маркера, потребує попереднього відбору штамів S. cerevisiae, нездатних рости на середовищі без лейцину, тобто з пошкодженим геном LEU2. Тому такий підхід не може бути застосовано для трансформації промислових штамів дріжджів S. cerevisiae, які переважно є прототрофними. В основу корисної моделі поставлена задача отримати рекомбінантні штами дріжджів S. cerevisiae із підвищеною активністю лужної фосфатази за рахунок експресії гена РНО8 під контролем сильного конститутивного промотора гена алкогольдегідрогенази (АDН1) у складі вектора для мультикопійної інтеграції в геномну ДНК дріжджів. Поставлена задача вирішується тим, що у способі отримання рекомбінантних штамів дріжджів S. cerevisiae з підвищеною активністю лужної фосфатази, згідно з корисною моделлю, в геном дріжджів S. cerevisiae вводиться сконструйований нами вектор для мультикопійної інтеграції, який містить експресійну касету, що складається з промотора гена алкогольдегідрогенази (ADH1), відкритої рамки зчитування (ВРЗ) гена лужної фосфатази (РНО8) та термінатора гена цитохрому С (CYC1), та модифікований ген kanМХ4 (виконує роль селективного маркера), фланковані δ-послідовностями, що забезпечує підвищення ферментативної активності лужної фосфатази. У запропонованому способі використовуються методи: полімеразна ланцюгова реакція (ПЛP), конструювання рекомбінантних плазмід, виділення плазмід з Escherichia соlі, рестрикційний аналіз, електрофорез в агарозному гелі, трансформація Е. соlі методом електропорації, описані в [5]. Трансформацію S. cerevisiae проводять, як описано в [6]. Виділення сумарної ДНК з трансформантів S. cerevisiae проводиться як описано в [7]. Визначення питомої активності лужної фосфатази проводиться як описано в [8]. Дот-блот гібридизацію проводиться як описано в [5]. Спосіб отримання рекомбінантних штамів дріжджів S. cerevisiae з підвищеною активністю лужної фосфатази ілюструється кресленнями: 1 UA 79020 U 5 10 15 20 25 30 35 На Фіг. 1. зображено лінійну схему плазміди pUC57-deltal_2-ADHpr-PHO8-CYCt-kanMXmut, де фрагмент, що містить ген РНО8 S. cerevisiae, позначено прямокутником з колами; фрагмент, що містить промотор ADH1 S. cerevisiae, позначено прямокутником з ромбами; фрагмент, що містить термінатор CYC1 S. cerevisiae, позначено прямокутником з хрестиками; фрагмент, що містить модифікований селективний маркер kаnМХ4, позначено сірим прямокутником; фрагменти, що містять δ-послідовності ретротранспозона Ту1, позначено чорними стрілками; тонкою чорною лінією позначено бактерійну частину вектора. На Фіг. 2. зображено дот-блот гібридизацію, що проводилася для визначення кількості копій гена РНО8 у геномі рекомбінантних штамів, де BY4742 - штам дикого типу, що маг 1 копію гена РНО8 в геномній ДНК; BY+PHО8 mut - рекомбінантні штами, що містять вектор pUC57-deltal_2ADHpr-PHO8-CYCt-kanMXmut з модифікованим геном каnМХ4; BY+PHO8 delta - рекомбінантні штами, що містять вектор з немодифікованим геном каnМХ4. На Фіг. 3. зображено питому активність лужної фосфатази, виражену в мкмоль продукту/мг білка*хв., в безклітинних екстрактах рекомбінантних штамів S. cerevisiae в порівнянні зі штамом дикого типу. Позначення штамів такі ж, як на Фіг. 2. Спосіб отримання рекомбінантних штамів дріжджів S. cerevisiae з підвищеною активністю лужної фосфатази здійснюють кількома етапами: Етап 1. Конструювання плазміди, що містить δ-послідовності та ген PHO8 під промотором ADН1 На початковому етапі геномну ДНК S. cerevisiae BY4742 використовують як матрицю для ампліфікації δ-послідовностей за допомогою ПЛР: частину послідовності YJRWdeltal2 [9] розміром 154 пн ампліфікують з допомогою праймерів SM16/SM17 (таблиця) , іншу частину розміром 180 пн ампліфікують з допомогою праймерів SM18/SM19. В подальшому обидва фрагменти об'єднують з допомогою ПЛР з використанням праймерів SM16/SM19, обробляють рестриктазами ЕсоRI та HindIII і клонують у плазмідний вектор pUC57. Сконструйовану плазміду позначено pUC57-deltal_2. Фрагмент ДHК розміром 807 пн, що відповідає промотору гена ADH1 (кодує алкогольдегідрогеназу), ампліфікують з геномної ДHК штаму S. cerevisiae BY4742 за допомогою праймерів Ко419 і Ко420. Фрагмент ДНК розміром 269 пн, що відповідає термінатору гена CYC1 (що кодує цитохром С), ампліфікують з геномної ДHК штаму S. cerevisiae BY4742 за допомогою праймерів Ко453 та Ко454. Потім ці два фрагменти об'єднують з допомогою ПЛР з використанням праймерів Ко419 і Ко454. Отриманий фрагмент ДHК обробляють ендонуклеазами рестрикції SalІ і XmaІ і клонують по відповідних сайтах у плазміду pUC57deltal_2. Отриману плазміду позначено pUC57-deltal_2-ADHpr-CYCt. Фрагмент ДHK розміром 1701 пн, що відповідає ВРЗ гена РНО8 S. cerevisiae, ампліфікують з використанням праймерів Ко508 і Ко509 і геномної ДНК BY4742 як матриці. Після очистки цей фрагмент обробляють ендонуклеазами рестрикції ВаmHI і NotI і клонують в плазміду pUC57-deltal_2-ADHpr-CYCt. Отриманий вектор названо pUC57-deltal_2-ADHpr-PHO8-CYCt. Таблиця Перелік праймерів, які використовують на 1 та 2 етапах способу Назва праймера SM16 Послідовність нуклеотидів SM17 SM18 SM19 Ко419 Ко420 Ко446 Ко447 Ко453 Ко454 Ко508 Ко509 2 UA 79020 U 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 Етап 2. Модифікацій гена kanМХ4, що забезпечує резистентність до антибіотика генетицину. Ген kanМХ4 застосовується як гетерологічний домінантний селективний маркер для S. cerevisiae. Наявність щонайменше однієї копії цього гена в геномній ДНК дріжджів забезпечує їх резистентність до антибіотика генетицину (в концентрації 200 мг/л для S. cerevisiae). Була поставлена задача модифікувати ген kanМХ4 таким чипом, щоб він працював менш ефективно. Тоді для селекції дріжджових трансформантів необхідна наявність багатьох копій модифікованого селективного маркера в геномі відповідних штамів. Селекцію модифікованого гена kanМХ4 здійснюють в клітинах Е. соlі. Для цього спочатку визначають мінімальну концентрацію генетицину, що здатна інгібувати ріст культури Е. соlі - це 2 мг генетицину на 1 л середовища. В подальшому проводять ПJIP з використанням праймерів Ко446 та Ко447 (див. табл.) на матриці плазміди pRS303K, що містить у своєму складі ген kanМХ4, за умов, що сприяють виникненню великої кількості помилок при копіюванні ланцюга ДНК (висока 2+ 2концентрація іонів Mg , наявність іонів Мn , непропорційні концентрації нуклеотидтрифосфатів у реакційній суміші, використання ДНК-полімерази з низькою точністю зчитування). Сукупність ампліфікованих фрагментів ДНК, що містять у своєму складі різноманітні нуклеотидні заміни, обробляють ендонуклеазою рестрикції ХbаІ і клонують у відповідний сайт плазміди pUC57. Відбір трансформантів Е. соlі, що містять плазміду зі вставкою, проводять на середовищі з ампіциліном (100 мг/л) та генетицином (2 мг/л). Отримані колонії трансформантів за допомогою методу реплік переносять на середовище з вищою концентрацією генетицину (10 мг/л) і відбирають трансформацій, що не здатні рости при такій концентрації антибіотика. У подальшому з одного з відібраних трансформантів Е. соlі отримують плазміду, що містить у своему складі модифікований ген kanМХ4. Модифікований ген kanМХ4 у складі SacI/SmaIфрагмента, обробленого Т4-ДНК-полімеразою, для утворення "тупих" кіпців клонують у Хbалінеаризований та оброблений Т4-ДНК-полімеразою вектор pUC57-deltal_2-ADHpr-PHO8-CYCt. Отриману плазміду позначено pUC57-deltal_2-ADHpr-PHO8-CYCt-kanMXmut (Фіг. 1). Також для порівняння конструюють вектор, що містить нативний ген kanМХ4, його позначено pUC57deltal_2-ADHpr-РHO8-CYCt-kanMX. Етап 3. Конструювання рекомбінантних штамів S. cerevisiae. Отримані на попередньому етапі роботи вектори pUC57-deltal_2-ADHpr-HO8-CYCtkanMXmut та pUC57-deltal_2-ADHpr-PHO8-CYCt-kanMX обробляють ендонуклеазою рестрикції AhdI (при цьому видаляється частина вектора, що відповідає плазміді pUC57) і використовують для трансформації штаму S. cerevisiae BY4742. Селекцію генетицин-резистентних трансформантів проводять на середовищі YPD з додаванням 200 мг/л генетицину. Наявність в геномі трансформантів експресійної касети ADHpr-PHO8 перевіряють за допомогою ПЛР і використанням відповідної пари праймерів (Ко419 та Ко509) (див. табл.). Визначення копійності гена РНО8 в геномі рекомбінантних штамів здійснюється за допомогою дот-блот гібридизації (Фіг. 2). Вектор pUC57-dеltal_2-ADHpr-PHO8-CYCt-kanMX забезпечує високу частоту 3 трансформації S. cerevisiae, ~10 трансформантів/мкг ДНК, проте включається в геном найчастіше в 1-2 копіях, а вектор pUC57-deltal_2-ADHрr-РHO8-CYCt-kanMXmut, що забезпечує 1 значно нижчу частоту трансформації, ~10 трансформантів/мкг ДНК, дозволяє отримати трансформанти, що містять від 3 до 7-9 додаткових копій гена РНО8. Визначення питомої активності лужної фосфатази у рекомбінантних штамів (Фіг. 3) показало, що штами, які містять вектор pUC57-deltal_2-ADHpr-PHO8-CYCt-kanMXmut мають від 7 до 35 разів вищу відповідну ферментативну активність у порівнянні з реципієнтним штамом BY4742 та у 2-10 разів вищу у порівнянні зі штамами, що містять вектор pUC57-deltal_2-ADHрr-РHO8-CYCt-kanMX. Значення активності лужної фосфатази в отриманих рекомбінантних штамів S. cerevisiae добре корелюють з кількістю додаткових копій гена РНО8 у їх геномі. Отже, вектор pUC57-deltal_2ADHpr-PHO8-CYCt-kanMXmut забезпечує мультикопійну інтеграцію гена РНО8у геном S. cerevisiae. Джерела інформації: 1. Stefan de Kok et al. // FEMS Yeast Research-2012. - Vol. 12. - P. 387-397. 2. Corey L. et al. // Journal of Cell Science-1998 vol. 111-P. 2455-2464. 3. Lee F.W.F. et al. // Appl Microbiol Biotechnol-1997-vol. 48-P. 339-345. 4. Romanos М.Л. et al. // Yeast-1992-vol. 8-P. 423-488. 5. Sambrook J., Fritsh E.F., Maniatis T. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York. 1989. 6. Gietz R.D. et al. // Methods in Molecular Biology-2006-vol. 313-P. 107-120. 7. Wach A., Pick H., Philipsen P. In: Molecular Genetics of Yeast. A Practical Approach (Johnston, J.R., Ed.), IRL Press, Oxford.-1994. - P. 1-16. 3 UA 79020 U 8. Kaneko Y. et al. // Моl. Cell Biol.-1982-vol. 2-P. 127-137. 9. Saccharomyces Genome Database// www.yeastgenome.org/ ФОРМУЛА КОРИСНОЇ МОДЕЛІ 5 10 Спосіб отримання рекомбінантних штамів дріжджів Sacchromyces cerevisiae з підвищеною активністю лужної фосфатази, який відрізняється тим, що в геном дріжджів S. cerevisiae вводять вектор для мультикопійної інтеграції, який містить експресійну касету, що складається з промотору гена алкогольдегідрогенази (ADН1), відкритої рамки зчитування гена лужної фосфатази (РНО8) та термінатора ієна цитохрому С (CYC1), та модифікований ген kаnМХ4 (виконує роль селективного маркера), фланковані δ-послідовностями, для забезпечення підвищення ферментативної активності лужної фосфатази у 20-30 разів в порівнянні з вихідним штамом. 4 UA 79020 U Комп’ютерна верстка І. Скворцова Державна служба інтелектуальної власності України, вул. Урицького, 45, м. Київ, МСП, 03680, Україна ДП “Український інститут промислової власності”, вул. Глазунова, 1, м. Київ – 42, 01601 5